Resumo
Os perfis de resistência de Staphylococcus aureus isolados a partir do leite de vacas com mastite, óstios papilares dos tetos e das teteiras foram estudados. As amostras de leite e dos óstios foram obtidas antes da ordenha dos animais e as das teteiras antes e durante a ordenha. Os testes de sensibilidade in vitro foram realizados de acordo com a técnica de Kirby e Bauer, utilizando-se 12 princípios ativos, com confirmação prévia de todas as amostras de S. aureus por técnicas moleculares. O perfil de resistência mais comum de S. aureus isolados no leite, óstios e insufladores foi à penicilina (48,3%, 36,8% e 25,9%, respectivamente). Além disso, em todas as fontes estudadas encontrou-se S. aureus com resistência à oxacilina, com características de multiresistência a outros antimicrobianos. O tratamento da mastite bovina deve ser realizado somente após o conhecimento da sensibilidade dos microrganismos responsáveis pela etiologia da doença aos diversos antimicrobianos. O isolamento de estirpes resistentes à oxacilina ilustra os riscos de transmissão destes patógenos pelo leite.Referências
1. Zadoks RN, Van Leeuwen WB, Kreft D, Fox LK, Barkema HW, Schukken YH et al. Comparison of Staphylococcus aureus isolatesfrom bovine and human skin, milking equipment, and bovine milk byphage typing, pulsed-field gel electrophoresis, and binary typing. J. Clin. Microbiol. 2002, 40 (11): 3894-3902.
2. Araújo WP. Fagotipagem de cepas de Staphylococcus aureus resistentes a antibióticos, isoladas de leite. Braz. J. Vet. Res. Anim. Sci. 1998, 35 (4):161-165.
3. Sabour PM, Gill JJ, Lepp D, Pacan JC, Ahmed R, Dingwell R et al. Molecular typing and distribution of Staphylococcus aureus isolatesin Eastern Canadian Dairy Herds. J Clin Microbiol. 2004, 42 (8):3449–3455.
4. Fagundes, H, Oliveira, CAF. Infecções intramamárias causadas por Staphylococcus aureus e suas implicações em saúde pública. Cienc. Rural 2004, 34 (4): 1315-1320.
5. Harmon RJ, Eberhart RJ, Jasper DE, Langlois BE, Wilson RA. Microbiological procedures for the diagnosis of bovine udder infection. Arlington (VA): National Mastitis Council; 1990.
6. Ingawa K, Adkinson R, Gough R. Evaluation of gel teat cleaning andsanitizing compound status of the goat udder. J Dairy Res. 1992, 59:21-28.
7. Mcdonald J, Kinsel ML, Adams DS, Darlington R.L. Studying theeffect of backflushing milking units. Vet. Med. 1993, 88: 382-386.
8. Holmberg O. Staphylococcus epidermidisisolated from bovine milk.Acta Vet Scand. 1973, 45: 1-144.
9. Holt JG, Krieg NR, Sneath PHA, Staley JT, Williams ST. Gram-positivecocci. In: Bergey’s Manual Of Determinative Bacteriology. 9th ed. Baltimore: Ed. Williams e Wilkins; 1994. p. 544-551.
10. Bauer AW, Kirby WMM, Truck M. Antibiotic susceptibility testing bya standardized single disc method. Am J Clin Pathol. 1966, 45: 493-496.
11. NCCLS. Clinical and Laboratory Standards Institute. PerformanceStandards for Antimicrobial Susceptibility Testing. 15th InformationalSupplement 2005, 25 (1): 177p.
12. Ferreira LM, Nader Filho A, Oliveira E, Zafalon LF, Souza V.Variabilidade fenotípica e genotípica de estirpes de Staphylococcus aureus isoladas em casos de mastite subclínica bovina. Cienc. Rural2006, 36 (4): 1228-1234.
13. Martineau F, Picard FJ, Roy PH, Ouellette M, Bergeron MG. Species-specific and ubiquitous-DNA-based assays for rapid identification of Staphylococcus aureus. J Clin Microbiol., v. 36, p. 618-623, 1998.
14. Hunter PR, Gaston MA. Numerical index of the discriminatory abilityof typing systems: an application of Simpson ́s index of diversity. J Clin Microbiol. 1988, 26 (11): 2465-2466.
15. Godden SM, Jansen JT, Leslie KE, Smart NL, Kelton DF. The effectof sampling time and sample handling on the detection of Staphylococcus aureus in milk from quarters with subclinical mastitis.Can Vet J. 2002, 43: 38-42.
16. Lange C, Cardoso M, Senczek D, Schwarz S. Molecular subtyping of Staphylococcus aureus isolates from cases of bovine mastitis in Brazil. Vet Microbiol. 1999, 67: 127-141.
17. Costa EO, Garino Jr F, Ribeiro AR, Watanabe ET, Melville PA, BenitesNR et al. Resistência aos antimicrobianos de microrganismos do gênero Staphylococcus isolados de mastite bovina no decênio de 1992 a2001. Revista Napgama. 2004, 7 (2):13-20.
18. Vintov J, Aarestrup FM, Zinn CE, Olsen JE. Association betweenphage types and antimicrobial resistance among bovine Staphylococcus aureus from 10 countries. Vet Microbiol. 2003, 95 (1-2): 133-147.
19. André MCDPB, Campos MRH, Vieira CAS, Santos PP, Borges LJ, SerafiniA B. Susceptibilidade antimicrobiana de cepas de Staphylococcus aureusisoladas de manipuladores, leite cru e queijo Minas Frescal em laticínio de Goiás, Brasil. Hig Aliment. 2005, 19 (130) (encarte eletrônico).
20. Pacheco JT, Martins NE, Costa GM, Pereira UP, Silva N. Susceptibilidade a antimicrobianos de Staphylococcus aureus isolados de mamite bovina em Minas Gerais durante o período de 1997-2006.In: Anais do 4º Encontro de Pesquisadores em Mastites. Botucatu: Universidade Estadual Paulista – Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia, 2007: 94.
21. Nader Filho A, Ferreira LM, Rossi Jr O, Oliveira, RP. Sensibilidade antimicrobiana dos Staphylococcus aureus isolados no leite de vacas com mastite. In: Anais do 9º Congresso Panamericano de Leite. Porto Alegre, 2006: 311-315.
22. Amaral LA, Nader Filho A, Rossi Júnior OD, Penha LHC. Ação de antibióticos e quimioterápicos sobre alguns agentes bacterianos damastite bovina, isolados da água utilizada no processo de obtenção do leite. Arq Bras Med Vet Zootec. 1996, 48 (5): 525-532.
23. Mandell G, Douglas J, Bennett R. Principles and practices of infectious diseases. 4th ed. Edinburgh: Churchill Livingstone Ltd.; 1995.
24. Sol J, Sampimom OC, Noordhuizen JPTM et al. Sensitivity pattern of Staphylococcus aureus isolated from bovine mastitis in the Netherlands from 1964 to 2001. In: Anais do 2º Congresso Panamericano de Qualidade do Leite e Controle de Mastite. Ribeirão Preto, 2002: 116.
25. Lee JH. Methicillin (oxacillin) – resistant Staphylococcus aureus strains isolated from major food animals and their potential transmission to humans. App Environm Microbiol. 2003, 69 (11):6489-6494.
26. Strommenger B, Kettlitz C, Werner G, Witte W. Multiplex PCR assay for simultaneous detection of nine clinically relevant antibiotic resistance genes in Staphylococcus aureus. J Clin Microbiol. 2003, 41(9): 4089-4094.
27. Cuevas O, Cercenado E, Vindel A, Guinea J, Sanchez-Conde M, Sanchez-Somolinos M, et al. Evolution of the antimicrobial resistanceof Staphylococcus spp. In Spain: five nationwide prevalence studies, 1986 to 2002. Antimicrob Agents Chemother. 2004, 48 (11): 4240-4245.
28. Santos FGB, Oliveira WLM, Garino Jr F, Costa EO, Leal Balbino TC. Investigação dos mecanismos de resistência à oxacilina em Staphylococcus aureus isolados de casos de mastite bovina. Revista Napgama 2005, 8 (2):14-17.
29. Brito MAVP, Brito JRF, Silva MAS, Carmo RA. Concentração mínima inibitória de dez antimicrobianos para amostras de S. aureus isoladas de infecção intramamária bovina. Arq Bras Med Vet Zootec. 2001, 53 (5): 10-17.
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