Resumo
O objetivo deste estudo foi avaliar a possibilidade da manutenção da fecundidade e oviposição
em triatomíneos após décadas de criação em condições de laboratório. Foi observado o desempenho de 11
colônias de Triatoma infestans do Laboratório de Triatomíneos do Instituto Adolfo Lutz. Os insetos foram
mantidos em temperatura e umidade constantes (27-28°C e 70-80%, respectivamente) e acasalados em
diferentes proporções de machos e fêmeas. Dois ritmos de alimentação foram utilizados. No primeiro, os
triatomíneos foram alimentados semanalmente, e no segundo, o ritmo de alimentação foi quinzenal ou a
cada 21 dias.
Durante o estudo marrecos foram utilizados como fonte de sangue. Os resultados confirmaram a importância
do ritmo de alimentação para a oviposição. Insetos que receberam alimentação semanal apresentaram os
melhores índices de oviposição, representados pelo número de ovos por fêmea por dia (ofd), entre 0.39 e
4.40 ofd, sendo mais freqüente taxas acima de 1.30 ofd. Colônias que tiveram alimentação quinzenal ou a
cada 21 dias apresentaram inexpressivos índices de oviposição, entre 0.05 e 1.07 ofd, sendo mais freqüente
inferior a 0.30 ofd.
Concluiu-se que após décadas de criação em condições de laboratório, é possível manter a fecundidade e
a capacidade de oviposição dentro dos padrões normais, em colônias de Triatoma infestans, se o ritmo de
alimentação dos adultos não exceder 7 dias. O ritmo de alimentação não afetou o índice de sobrevivência
dos adultos, mas foi crítico para a fecundidade e oviposição.
Referências
1. Borges-Pereira, J. et al. Xenodiagnosis in chronic Chagas' disease. I. The sensitivity of Panstrongylus megistus and Triatoma infestans. Rev. Soc. Bras. Med. trop., 29: 341-347, 1996.
2. Brumpt, E. Le xenodiagnostic. Application au diagnostic de quelques infections parasitaires et en particulier a la Trypanosomose de Chagas. Bull. Soc. Pathol. Exot., 7: 706-710, 1914.
3. Corrêa, F.M.A. Estudo Comparativo do ciclo evolutivo do Triatoma infestans alimentado em diferentes animais (Hemiptera, Reduviidae). Papéis Avulsos Dep. Zool., São Paulo, 15: 177-200, 1962.
4. Dias, E. Criação de triatomíneos no laboratório. Mem. Inst. Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, 33: 407-412, 1938.
5. Goodchild, A.J.P. Some observations on growth and egg production of blood - sucking reduviids Rhodnius prolixus and Triatoma infestans. Proc. R. Entomol. Soc. Lond. Ser. A, 30: 127-136, 1955.
6. Hack, W.H. Estudios sobre biologia del Triatoma infestans (Klug, 1834) (Hem., Reduviidae). Ann. Inst. Med. Reg., 4: 125-147, 1955.
7. Lent, H.; Wygodzinsky, P. Revision of the Triatominae (Hemiptera, Reduviidae) and their significance as vector of Chagas' disease. Bull. Am. Nat. Hist., 163: 123-520, 1979.
8. Meirelles, D.J. et al. No change in one biological parameter for Dipetalogaster maximus after 20 years of laboratory colonisation. Rev. Soc. Bras. Med. trop., 28: 53, 1995.
9. Minter, D.M.; Minter-Goedbloed, E.; Marshall, T.F. Comparative xenodiagnosis with three triatominae species of different hosts with natural and experimental species of chronic infections with Trypanosoma (Schizotrypanum) cruzi. Trans. R. Sec. Trop. Med. Hyg., 72: 84-91, 1978.
10. Moreira, C.J.; Perlowagora-Szumlewicz, A. Attempts to improve xenodiagnosis: comparative test of sensibility using Rhodnius neglectus, Panstrongylus megistus, Triatoma vitticeps and Triatoma infestans in endemic areas of Brazil. Mem. Inst. Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, 92: 91-96, 1997.
11. Perlogowagora-Szumlewicz, A. Estudos sobre a biologia do T. infestans, o principal vetor da doença de Chagas no Brasil. (Importância de algumas de suas características biológicas no planejamento de esquemas de combate a esse vetor). Rev. Bras. Malariol. D. Trop., 21: 117-159, 1969.
12. Perlowagora-Szumlewicz, A. Laboratory colonies of triatominae, biology and population dynamics. Pan Am. Health Org. Sci. Publ.,318: 63-82, 1976. Perlowagora-Szumlewicz, A.; Cruz, H.N.; Araújo, J.A.N. Species and stage interaction in the feeding behaviour of vectors of Chagas disease (The importance of determinants in planning for greater efficacy and standardization of xenodiagnostic procedures). Rev. Inst. Med. Trop., São Paulo, 15: 139-150, 1973.
14. Perlowagora-Szumlewicz, A.; Muller, C. A. Studies in search of suitable experimental insect model for xenodiagnosis of hosts with Chagas' disease. 1. Comparative xenodiagnosis with nine triatomine species of animals with acute infections by Trypanosoma cruzi. Mem. Inst. Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, 77: 37-53, 1982.
15. Perlowagora-Szumlewicz, A.; Muller, C.A. Studies in search of suitable experimental insect. Model for xenodiagnosis of hosts with Chagas' disease. 2 Attempts to upgrade the reliability and the efficacy of xenodiagnosis in chronic Chagas disease. Mem. Inst. Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, 82: 259-272, 1987.
16. Santos, A.H.; Silva, J.G.; Rassi, A. A comparative study between natural and artificial xenodiagnosis in chronic Chagas' disease patients. Rev. Soc. Bras. Med. trop., 28: 367-373, 1995.
17. Schenone, H.; Alvaro, E.; Rojas, A. Bases y rendimento de xenodiagnóstico com la infeccion chagásica humana. Bol. Chil. Parasitol., 29: 24-26, 1974.
18. Silva, R.L. Aspectos da História Natural do Triatoma infestans Klug, 1834 (Hemiptera, Reduvidade, Triatominae). São Paulo, 1982. (Instituto de. Ciências Biomédicas, Universidade de São Paulo).
19. Tolezano, J.E. et al. Efeitos do jejum e da temperatura em laboratório na infecção de triatomíneos por Trypanosoma cruzi. Rev. Inst. Adolfo Lutz, 43: 25-32, 1983.
20. Wigglesworth, V.B. The principles of insect phisiology. 7th ed., London: Chapman & Hall, 1972. 827p.
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