Palavras-chave
infecção intramamária
antimicrobianos
resistência
Como Citar
Resumo
Os objetivos deste estudo foram avaliar a participação de Staphylococcus coagulase-negativa (SCN) na etiologia da mastite em rebanhos bovinos leiteiros da região sul de Minas Gerais, identificar as espécies bacterianas envolvidas e traçar os perfis de susceptibilidade destas às drogas antimicrobianas. Foram analisadas 2.492 vacas de 35 rebanhos, sob diferentes sistemas de manejo, no período de 2004 a 2008. Os índices de mastite clínica e subclínica foram de 9,87% e 52,2%, respectivamente. Foram cultivadas 1.645 amostras de leite de quartos mamários individuais, e 120 cepas de SCN foram isoladas. A frequência média de isolamentos de SCN entre os rebanhos foi de 8,35%, com variações de 0% a 27,27%. Observou-se grande diversidade de espécies de SCN, sendo as mais frequentes Staphylococcus hyicus (15,0%), Staphylococcus chromogenes (12,5%), Staphylococcus gallinarum (12,5%), Staphylococcus lentus (12,5%) e Staphylococcus epidermidis (10,8%). Os testes de antibiograma apontaram que 28% dos isolados eram resistentes à penicilina, 21% à estreptomicina, 18% à ampicilina e 14% à tetraciclina. Todas as amostras isoladas apresentaram 100% de sensibilidade frente a danofloxacina, enrofloxacina e florfenicol. Baixa frequência de amostras multirresistentes às drogas antimicrobianas foi observada na população estudada.Referências
1. Sears PM, Mccarthy, KK. Management and treatment of staphylococcal mastitis. Vet Clin North Am Food Anim Pract. 2003; 19(1): 171-85.
2. Costa EO, Mota RA, Santos FGB, Mármore C, Arcaro JRP, Peres AAC. Contagem de células somáticas de amostras de leite de glândulas mamárias de fêmeas bovinas em lactação infectadas por microrganismos dos gêneros Streptococcus, Staphylococcus e Corynebacterium. Rev Napgama. 2005; 8(2): 3-7.
3. Sargeant JM, Scott HM, Leslie KE, Ireland MJ, Bashiri A. Clinical mastitis in dairy cattle in Ontario: frequency of occurrence and bacteriological isolates. Can Vet J. 1998; 39(1): 33-8.
4. Brabes KCS, Carvalho EP, Dionísio FL, Pereira, ML, Garino F, Costa EO. Participação de espécies coagulase positivas e negativas produtoras de enterotoxinas do gênero Staphylococcus na etiologia dos casos de mamite bovina em propriedades de produção leiteira dos Estados de São Paulo e Minas Gerais. Rev Napgama. 1999; 2(3): 4-11.
5. Silva N. Diagnóstico de mamite em animais de importância econômica. III Encontro de Pesquisadores em Mamites. Botucatu: Anais. Botucatu: FMVZ-UNESP, 1999. p. 51-55.
6. Laffranchi A, Muller EE, Freitas JC, Pretto-Giordano LG, Dias JA, Salvador R. Etiologia das infecções intramamárias em vacas primíparas ao longo dos primeiros quatro meses de lactação. Ciênc Rural. 2001; 31(6): 1027-32.
7. Rajala-Schulz PJ, Smith KL, Hogan JS, Love BC. Antimicrobial susceptibility of mastitis pathogens from first lactation and older cows. Vet Microbiol. 2004; 102(1-2): 33-42.
8. Costa EO, Ribeiro AR, Watanabe ET, Prada RB, Silva JAB, Costa, EO et al. Prevalence of intramammary infections in primigravid Brazilian dairy heifers. Prev Vet Med. 1996; 29(2): 151-55.
9. Piepers S, De Vliegher S, de Kruif A, Opsomer G, Barkema HW. Impact of intramammary infections in dairy heifers on future udder health, milk production, and culling. Vet Microbiol. 2009; 134(1-2): 113-20.
10. Sampimon OC, Barkema HW, Berends IM, Sol J, Lam TJ. Prevalence and herd-level risk factors for intramammary infection with coagulase-negative staphylococci in Dutch dairy herds. Vet Microbiol. 2009; 134(1-2): 37-44.
11. Schukken YH, González RN, Tikofsky LL, Schulte HF, Santisteban CG, Welcome FL et al. CNS mastitis: Nothing to worry about? Vet Microbiol. 2009; 134(1-2): 9-14.
12. Lam TJ, Schukken YH, van Vliet JH, Grommers FJ, Tielen MJ, Brand A. Effect of natural infection with minor pathogens on susceptibility to natural infection with major pathogens in the bovine mammary gland. Am J Vet Res. 1997; 58(1): 17-22.
13. White LJ, Schukken YH, Lam TJ, Medley GF, Chappell MJ. A multispecies model for the transmission and control of mastitis in dairy cows. Epidemiol Infect. 2001; 127(3): 567-76.
14. Zadoks RN, Allore HG, Barkema HW, Sampimon OC, Wellenberg GJ, Gröhn YT, Schukkent YH. Cow- and quarter-level risk factors for Streptococcus uberis and Staphylococcus aureus mastitis. J Dairy Sci. 2001; 84(12): 2649-63.
15. Silva, N. Doença da glândula mamária/Mamite bovina. In: Marques, D. C. Criação de bovinos/ Dorcimar da Costa Marques. 7ª ed. rev., atual e ampl. – Belo Horizonte – CVP Consultoria Veterinária e Publicações; 2003. p. 435-51.
16. Taponen S, Simojoki H, Haveri M, Larsen HD, Pyörälä S. Clinical characteristics and persistence of bovine mastitis caused by different species of coagulase-negative staphylococci identified with API or AFLP. Vet Microbiol. 2006; 115(1-3): 199-207.
17. Brito MAVP, Brito JRF, Ribeiro MT, Veiga VMO. Padrão de infecção intramamária em rebanhos leiteiros: exame de todos os quartos mamários de vacas em lactação. Arq Bras Med Vet Zootec. 1999; 51(2): 129-35.
18. Quinn PJ, Carter ME, Markey B, Carter GR. Clinical veterinary microbiology. London: Wolfe; 1994.
19. Holt JG, Krieg NR, Sneath PHA, Williams ST. Bergey ́s Manual of Determinative Bacteriology. 9ª ed. Baltimore (USA): Williams & Wilkins; 1994.
20. CLSI. Performance standards for antimicrobial disk and dilution tests for bacteria isolated from animals; approved standard. CLSI Document M31-A3. 3ª ed. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2008.
21. Krumperman PH. Multiple antibiotic resistance indexing of Escherichia coli to identify high-risk sources of fecal contamination of foods. Appl Environ Microbiol. 1983; 46(1): 165-70.
22. Nader Filho A, Iturrino RPS, Rossi-Junior OD. Mastite subclínica em rebanhos produtores de leite gordura 3,2%. Arq Bras Med Vet Zootec. 1984; 36(5): 549-58.
23. Pardo RB, Sturion DJ, Basile JR, Chaves Neto AF, Duarte DDS, Fernandes AA et al. Levantamento dos agentes etiológico da mastite bovina na região de Arapongas (PR). Unopar Cient: Ciênc Biol Saúde. 1999; 1(1): 25-30.
24. Barbalho TCF, Mota RA. Isolamento de agentes bacterianos envolvidos na mastite subclínica bovina no Estado do Pernambuco. Rev Bras Saúde Prod Anim. 2001; 2(2): 31-6.
25. Donatele DM, Motta OV, Folly MM. Perfil antimicrobiano de linhagens de Staphylococcus spp coagulase positiva na mastite subclínica de vacas leiteiras nas regiões norte e noroeste do Estado do Rio de Janeiro. Rev Napgama. 2002; 5(2): 3-6.
26. Tenhagen BA, Köster G, Wallmann J, Heuwieser W. Prevalence of mastitis pathogens and their resistance against antimicrobial agents in dairy cows in Brandenburg, Germany. J Dairy Sci. 2006; 89(7): 2542-51.
27. Lüthje P, Schwarz S. Antimicrobial resistance of coagulase-negative staphylococci from bovine subclinical mastitis with particular reference to macrolide-lincosamide resistance phenotypes and genotypes. J Antimicrob Chemother. 2006; 57(5): 966-9.
28. Mendonça CL, Fioravant MCS, Silva JABA, Sousa MIL, Eurides D, Langoni H. Etiologia da Mamite Bovina. Vet Notíc. 1999; 5(1): 107-18.
29. Benites NR, Melville PA, Guerra JL, Costa EO. Avaliação do status microbiológico de diferentes estruturas de glândulas mamárias de vacas leiteiras abatidas. Rev Napgama. 2000; 3(3): 10-13.
30. Cunha AP, Silva LBG, Pinheiro Júnior JW, Silva DR, Oliveira AAF, Silva KPC et al. Perfil de sensibilidade antimicrobiana de agentes contagiosos e ambientais isolados de mastite clínica e subclínica de búfalas. Arq Inst Biol. 2006; 73(1): 17-21.
31. Sampimon OC, Vernooij JC, Mevius DJ, Sol J. Sensitivity to various antibiotics of coagulase-negative staphylococci isolated from samples of milk from Dutch dairy cattle. Tijdschr Diergeneeskd. 2007; 132(6): 200-4.
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Copyright (c) 2011 Lívia Lima dos Santos, Geraldo Márcio da Costa, Ulisses de Pádua Pereira, Marisa Araújo Silva, Nivaldo da Silva