Comparação entre o cultivo microbiológico e a PCR na identificação do complexo Mycobacteirum tuberculosis e da espécie Mycobacterium bovis em amostras bovinas
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Palavras-chave

tuberculose
bovino
Mycobacterium bovis
PCR

Como Citar

1.
Nassar AF de C, Miyashiro S, Piatti RM, Dib CC, Roxo E, Mendonça RZ. Comparação entre o cultivo microbiológico e a PCR na identificação do complexo Mycobacteirum tuberculosis e da espécie Mycobacterium bovis em amostras bovinas. Rev Inst Adolfo Lutz [Internet]. 1º de fevereiro de 2012 [citado 26º de dezembro de 2024];71(2):244-9. Disponível em: https://periodicos.saude.sp.gov.br/RIAL/article/view/32421

Resumo

Foi avaliado o desempenho das técnicas de cultivo microbiológico e de PCR na análise de amostras de órgãos bovinos com lesões suspeitas de tuberculose. Cinquenta e duas amostras, colhidas em abatedouros, foram analisadas pelo cultivo microbiológico e o DNA extraído foi amplificado por PCR, utilizando-se os primers NZ1 e NZ2, que identificam micobactérias do complexo M. tuberculosis, e o par de primers pncA que diferencia as espécies M. bovis e M. tuberculosis. As 30 amostras de colônias isoladas foram suspensas, e a amplificação do DNA extraído foi feita por PCR, empregando-se os mesmos pares de primers. Embora a concordância entre as técnicas de cultivo microbiológico e de PCR realizado diretamente nas amostras clínicas com os primers NZ1 e NZ2 tenha sido fraca (k=0,175), os dois pares de primers utilizados amplificaram os genes alvos quando aplicados em 100% do DNA extraído das 30 colônias isoladas. Pela PCR com par de primers pncA houve identificação de M. bovis nas colônias isoladas em curto intervalo de tempo, quando comparado aos testes bioquímicos. O uso concomitante de ambas as técnicas reduz o tempo para efetuar a confirmação do agente isolado, fator essencial nos estudos epidemiológicos e nas medidas de controle preventivas.
https://doi.org/10.53393/rial.2012.v71.32421
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Referências

1. Cousins DV, Bastida R, Cataldi A, Quse V, Redrobe S, Dow S, et al. Tuberculosis in seals caused by a novel member of the Mycobacterium tuberculosis complex: Mycobacterium pinnipedii sp.nov. Int J Syst Evol Microbiol. 2003;53:1305-14.

2. Corner LA. Post mortem diagnosis of Mycobacteirum bovisinfection in catlle. Vet Microbiol. 1994;40:53-63.

3. Anualpec. 2004. Anuário da Pecuária Brasileira. FNP Editors, p. 1-386. [Acesso em 2009 abr. 1]. Disponível em: [htpp://www.fnp.com.br].

4. BRASIL. Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento. Brasília. Programa Nacional de Controle e Erradicação de Brucelose e Tuberculose – PNCEBT. Manual Técnico. 2006:184.

5. Cedeño I, De Obaidía R, Sanjur O, Bayard V, Ortega-Barría E, Escobar C. Use of the polymerase chain reaction for diagnosing bovine tuberculosis in Panama. Rev Sci Tech. 2005;24(3):1067-75.

6. Niyaz Ahmed AS, Khan JR, Ganai NA. DNA amplification assay for rapid detection of bovine tubercle bacilli in semen. Anim Reprod Sci. 1999;57:15-21.

7. Shah DH, Verma R, Bakshi CS, Singh RK. A multiplex-PCR for the differentiation of Mycobacterium bovis and Mycobacterium tuberculosis. FEMS Microbiol Letter. 2002;214:39-43.

8. Kantor IN. Bacteriologia de la tuberculosis humana y animal. OPAS/OMS. 1979;11:63.

9. Bier O. Bacterologia e Imunologia. In: Micobatérias. São Paulo: Edições Melhoramentos; 1978. p. 585-610.

10. Wards BJ, Collins DM, Lisle GW. Detection of Mycobacterium bovis in tissues by polymerase chain reaction. Vet Microbiol. 1995;43:227-40.

11. Bermer-Melchior P. Drugeon HB. Inactivation of Mycobacterium tuberculosis for DNA typing analysis. J Clin Microbiol. 1999;37(7):2350-1.

12. Collins DM, Stephens DM. Identification of the insertion sequence, IS1081, in Mycobacterium bovis. FEMS Microbiol Letters. 1991;83:11-6.

13. De Los Monteros LEE, Galán JC, Gutiérrez SS, Marín JFG, Dominguez L, Rafael L, et al. Allele-specific PCR method based on pncA and oxyR for distinguishing Mycobacterium bovisfrom Mycobacterium tuberculosis: Intraspecific M. bovispncAsequence polymorfhism. J Clin Microbiol. 1998;36(1):239-42.

14. Thrusfield D. Diagnostic testing. In: Vet Epidemiol. London: The University Press; 1995. p. 266-85.

15. Araújo CP, Leite CQF, Prince KA, Jorge KSG, Osório ALAR. Mycobacterium bovis identification by molecular method from post-mortem inspected cattle obtained in abattoirs of Mato Grosso do Sul, Brazil. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2005;100(7):749-52.

16. Nassar AFC, Miyashiro M, Oliveira CG, Pacheco WA, Ogata RA. Isolation and identification of bovine tuberculosis in a Brazilian herd (São Paulo). Mem Inst Oswaldo Cruz. 2006;102(5):639-42.

17. Brisson-Noël A, Aznar C, Chureau C, Nguyen S, Pierre C, Bartoli M, et al. Diagnosis of tuberculosis by DNA amplification in clinical practice evaluation. The Lancet. 1991;338:364-6.

18. Suffys P, Vanderborght PR, Santos PB, Correa LAP, Bravin Y, Kritski AL. Inhibition of the polymerase chain reaction by sputum samples from tuberculosis patients after processing using a silica-guanidiniumthiocyanate DNA isolation procedure. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2001;96(8):1137-9.

19. Zanini MS, Moreira EC, Lopes MTP, Oliveira RS, Leão SC, Fiovaranti RL. Mycobacterium bovis: polymerase chain reaction identification in bovine lymphonode biopses and genotyping in isolates from Southeast Brazil by spoligotyping and restriction fragment length polymorphism. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2001;96(1):2089-813.

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Copyright (c) 2012 Alessandra Figueiredo de Castro Nassar, Simone Miyashiro, Rosa Maria Piatti, Cristina Corsi Dib, Eliana Roxo, Ronaldo Zucatelli Mendonça

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