Resistência a oxacilina em Staphylococcus spp isolado de leite mastítico
PDF

Palavras-chave

oxacilina
mastite bovina
mecA
Staphylococcus spp

Como Citar

1.
Diniz CM, Melo RT de, Mendonça EP, Coelho LR, Fonseca BB, Rossi DA. Resistência a oxacilina em Staphylococcus spp isolado de leite mastítico. Rev Inst Adolfo Lutz [Internet]. 1º de abril de 2010 [citado 4º de dezembro de 2024];69(4):482-8. Disponível em: https://periodicos.saude.sp.gov.br/RIAL/article/view/32605

Resumo

A mastite ocupa lugar de destaque entre as doenças que acometem o rebanho leiteiro, em virtude de problemas econômicos e de saúde pública. Staphylococcus spp são os agentes infecciosos mais envolvidos na etiologia da doença. Staphylococcus spp resistentes à oxacilina, isolados de amostras de leite provenientes de animais com histórico de mastite recorrente, foram analisadas utilizando-se os testes de difusão em gel, ágar de triagem, concentração mínima inibitória (CMI) e pesquisa do gene mecA. De 134 amostras de leite analisadas, Staphylococcus spp foi isolado em 55,22% das amostras (74/134). O teste de difusão em disco demonstrou que a maioria dos isolados apresentaram multiresistência, sendo 51,35% (38/74) resistentes à oxacilina. Esse perfil foi confirmado em paralelo pela CMI e pelo ágar de triagem. A análise molecular demonstrou que 33,78% dos isolados (25/74) possuíam o gene mecA, sendo mais frequentemente isolado em Staphylococcus aureus e Staphylococcus coagulase negativa, com índices de 48% (12/25) e 32% (8/25), respectivamente, seguido de S. intermedius com 16% (4/25) e de S. hyicus com 4% (1/25). O presente estudo denota o grave problema associado à Staphylococcus aureus resistente à oxacilina, bem como no meio rural, o que justifica a dificuldade de tratamento e a recorrência da infecção.
https://doi.org/10.53393/rial.2010.v69.32605
PDF

Referências

1. Pyorala, S. New strategies to prevent mastitis. Rep Domest Anim. 2002; 37(4):211-6.

2. Cunha AP, Silva LBG da, Pinheiro Júnior JW, Silva DR da, Oliveira AA da, Silva KPC da et al. Perfil de sensibilidade antimicrobiana de agentes contagiosos e ambientais isolados de mastite clínica e subclínica de búfalas. Arq Inst Biol. 2006; 73(1):17-21.

3. Santos FGB, Mota RA, Silveira-Filho VM, Souza HM, Oliveira MBM, Johner JMQ et al. Tipagem molecular de Staphylococcus aureus isolados do leite de vacas com mastite subclínica e equipamentos de ordenha procedentes do estado de Pernambuco. Rev Napgama. 2003; 6(1):19-23.

4.Lee JH. Methicillin (oxacillin)-resistant Staphylococcus aureusstrains isolated from major food animals and their potential transmission to humans. Appl Microbiol. 2003; 69(11):6489-94.

5. Lowy FD. Staphylococcus aureus infections. New Engl J Med. 1998; 339(8):520-32.

6. Freitas MFL, Pinheiro Júnior JW, Stamford TLM, Rabelo SS de A, Silva DR da, Silveira Filho VM da et al. Perfil de sensibilidade antimicrobiana in vitro de Staphylococcus coagulase positivos isolados de leite de vacas com mastite no agreste do estado de Pernambuco. Arq Inst Biol. 2005; 72(2):171-7.

7. Fagundes H, Oliveira CAF. Infecções intramamárias causadas por Staphylococcus aureus e suas implicações em saúde pública. Cien Rural. 2004; 34(4):1315-20.

8. Carvalho CE, Berezin EM. Monitoramento microbiológico seqüencial de secreção traqueal de pacientes intubados em UTI pediátrica. J Pediatr. 2004; 81(1):23-9.

9. Maranan MC, Moreira B, Boyle-Vavra S, Daum RS. Antimicrobial resistance in Staphylococci: epidemiology, molecular mechanisms and Clinical relevance. Infect Dis Clin North Am. 1997; 11(4): 813-49.

10.National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Methods for dilution antimicrobial susceptibility tests for bacteria that grow aerobically. Approved Standard M7-A6, Villanova, PA, 2003.

11. Peresi JTM, Almeida IAZC de, Cardiga EA, Marques DF, Carnicel FA, Hoffmann FL. Susceptibilidade antimicrobiana de cepas de Staphylococcus aureus e Salmonella spp isoladas de alimentos envolvidos em surtos de doenças bacterianas transmitidas por alimentos, ocorridos na região noroeste do Estado de São Paulo, no período de abril de 1990 a dezembro de 2003. Rev Inst Adolfo Lutz. 2006; 65(2):112-7.

12. Chambers HF. The changing epidemiology of Staphylococcus aureus? Emerg Infect Dis. 2001; 7(2): 178-82.

13. Ribeiro MER, Petrini LA, Aita MF, Balbinotti M, Stumpf JRW, Gomes JF et al. Relação entre mastites clínica, subclínica infecciosa e não infecciosa em unidades de produção leiteiras na região sul do Rio Grande do Sul. R Bras Agrociência. 2003; 9(3):287-90.

14. Koneman EM, Allen SD, Janda WM, Schreckenberger PC, Winn Junior NC. Diagnóstico microbiológico: texto e atlas colorido. 5ª ed. Rio de Janeiro (BR): Médsi; 2001.

15. Tortora GJ, Funke BR, Christine L. Microbiologia. 6ª ed. Porto Alegre (BR): Artmed; 2002.

16. Silva N, Junqueira VCA, Silveira NFA, Taniwaki MH, Santos RFS, Gomes RAR. Manual de métodos de análise microbiológica de alimentos. 3ª ed. São Paulo(BR): Varella; 2007.

17.Silva N, Junqueira VCA, Silveira NFA. Manual de métodos de análise microbiológica de alimentos. 2ª ed. São Paulo (BR): Varela; 2001.

18. Hirsh DC, Zee YC. Microbiologia veterinária. Rio de Janeiro (BR): Guanabara Koogan; 2003.

19. Kloos WE, Bannerman TL. Staphylococcus and Micrococcus. In: Murray PR, Baron EJ, Pfaller MA et al. Manual of clinical microbiology. 6ª ed. Washington: American Society for Microbiology; 1995. p. 282-98.

20. Brito MAVP, Campos GMM de, Brito JRF. Esquema simplificado para identificação de estafilococos coagulase-positivos isolados de mastite bovina. Cien Rural. 2002; 32(1):79-82.

21. National Committee for Clinical Laboratory Performance Standards (NCCLS). Methods for dilution antimicrobial susceptibility test for bacteria that grow aerobically. Approved Standard M7-A4, Villanova, PA, 2000.

22. Merlino J, Watson J, Rose B, Beard-pegler M, Gottlieb T, Bradbury R et al. Detection and expression of methicillin/oxacillin resitance in multidurg-resistante Staphylococcus aureus in Central Sydney, Australia. J Antimicrob Chemother.2002;49(5):793-801.

23. Sambrook J, Russel DW. Molecular cloning: a laboratory manual. 3ª ed. New York (NY): Cold Spring Harbor Laboratory Press; 2001.

24. Costa EO, Melville PA, Ribeiro AR, Viani FC, Mascolli R, Oliveira PJ. Mastite bovina: CMT versus microbiológico. Hora Vet. 1996; 15(89):53-4.

25. Sadoyama, G. Aspectos epidemiológicos de infecções relacionadas a cateteres vasculares centrais em pacientes cirúrgicos internados no Hospital de Clínicas da Universidade Federal de Uberlândia [dissertação de mestrado]. Uberlândia: Universidade Federal de Uberlândia; 2003.

26.Ribas, RM. Infecções Hospitalares em pacientes idosos: Aspectos epidemiológicos clássicos e moleculares associados a Staphylococcus aureus e Enterococcus spp [dissertação de mestrado]. Uberlândia: Universidade Federal de Uberlândia; 2003.

27. van Griethuysen A, van Loo I, van Belkum A, Vandenbroucke-Grauls C, Wannet W, van Keulen P. Loss of the mecA gene during storage of methicillin-resistant Staphylococus aureus strains. J Clin Microbiol. 2005;43(3):1361-65.

28. Hussain Z, Stoakes L, Massey V, Diagre D, Fitzgerald V, Sayed S el et al. Correlation of oxacillin MIC with mecA gene carriage in coagulase-negative Staphylococci. J Clin Microbiol. 2000; 38(2):752-4.

29. Brito MAVP, Brito JRF, Silva MAS, Carmo RA. Concentração mínima inibitória de dez antimicrobianos para amostras de Staphylococcus aureus isoladas de infecção intramamária bovina. Arq Bras Med Vet Zootec. 2001; 53(5):531-7.

30. Lee JH, Jeong Jae-Myung, Park Youn-Ho, Choi Sung-Sun, Kim Yong-Hwan, Chae Joon-Seok et al. Evaluation of the methicillin-resistant Staphylococcusaureus (MRSA)- Screen Latex Agglutination Test for Detection of MRSA of Animal Origin. J Clin Microbiol. 2004;42(6):2780-2.

Creative Commons License
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Copyright (c) 2010 Cristiane Matoso Diniz, Roberta Torres de Melo, Eliane Pereira Mendonça, Letícia Ríspoli Coelho, Belchiolina Beatriz Fonseca, Daise Aparecida Rossi

Downloads

Não há dados estatísticos.