Resumo
A capacidade ovicida de dois isolados do fungo nematófago Pochonia chlamydosporia (VC1 e VC4) sobre ovos de Enterobius vermicularis foram analisadas e comparadas em meio agar–água 2% (AA2%). Os ovos de E. vermicularis foram vertidos para placas de Petri com AA2% contendo os isolados fúngicos crescidos ,e em placas de Petri sem fungo como controle. Ao completarem 5 e 10 dias de incubação, cem ovos foram removidos e classificados de acordo com os seguintes parâmetros: efeito do tipo 1, efeito fisiológico e bioquímico sem prejuízo morfológico à casca do ovo; efeito do tipo 2, efeito lítico com alteração morfológica da casca e embrião; e efeito do tipo 3, efeito lítico com alteração morfológica do embrião e da casca, além de penetração de hifas e colonização interna do ovo. Os isolados fúngicos eficientes na destruição de ovos de E. vermicularis, apresentando o efeito do tipo 3 nos 5 e 10 dias de interação (p>0,01). Foi demonstrada a propriedade dos isolados de P. chlamydosporia (VC1 e VC4) em atuar de forma negativa sobre os ovos de E. vermicularis e, portanto, ser considerado um potencial candidato como produto a ser utilizado no controle biológico desse nematóide.Referências
1. Lee SC, Hwang KP, Tsai WS, Lin CY, Lee N. Detection of Enterobius vermicularis eggs in the submucosa of the transverse colon of a man presenting with colon carcinoma. Am J Trop Med Hyg. 2002; 67(5): 546-8.
2. Borquez C, Lobato I, Montalvo MT, Marchant P, Martinez P. Enteroparasitosis in schoolchildren of lluta valley, Arica, Chile. Parasitol Latinoam. 2004; 59(3-4):175-8.
3. Rey L. Bases da Parasitologia Médica 2nd ed. (RJ): Guanabara Koogan, 2001.
4. Cimerman B, Cimerman S. Enterobíase. Parasitologia Humana e seus Fundamentos Gerais. 2nd ed (RJ): Atheneu, 2001.
5. Cimerman S, Cimerman B. Enterobiasis. Rev Panamericana Infectol. 2005; 7(3):27-30.
6. Botero D, Restrepo M. Parasitosis intestinales por ne-matodos. En: Parasitosis Humanas. 3nd ed. Corporación para Investigaciones Biológicas. Medellín, 1998.
7. Araújo JV, Mota MA, Campos AK. Controle biológico de helmintos parasitos de animais por fungos nematófagos. Rev Bras Parasitol Vet. 2004; 13(1):165-70.
8. Braga FR, Araújo JV, Campos AK, Carvalho RO, Silva AR, Tavela AO, Maciel AS. Observação in vitro da ação dos isolados fúngicos Duddingtonia fl agrans, Monacrosporium thaumasium e Verticillium chlamydosporium sobre ovos de Ascaris lumbricoides (Lineu, 1758). Rev Soc Bras Med Trop. 2007; 40(3):356-8.
9. Lysek H. Classifi cation of ovicide fungi according to type of ovicidity. Acta Univ Palack Olomue. 1976; 76(1):9-13.
10. Fieldler ZA, Sosnowska D. Nematophagous fungus Paecilomyces lilacinus (Thom) Samson is also a biological agent for control of greenhouse insects and mite pests. Biol Control. 2007; 52(4):547-58.
11. Araújo JV, Santos MA, Ferraz S. Efeito ovicida de fungos nematófagos sobre ovos embrionados de Toxocara canis. Arq Bras Med Vet Zoot. 1995; 47(1):37-42.
12. Lysek H, Fassatiová O, Pineda NC, Hernández N, Lorenzo. Ovicidal fungi in soils of Cuba. Folia Parasitol 1982; 29(3):265-70.
13. Braga FR, Araújo JV, Campos AK, Araujo JM, Silva AR, Carvalho RO, Correa DN, Pereira CAJ. In vitro evaluation of the effect of the nematophagous fungi Duddingtonia fl agrans, Monacrosporium sinense and Pochonia chlamydosporia on Schistosoma mansoni eggs. World J Microb Biotechnol. 2008; 24(11):2713-16.
14. Braga FR, Araújo JV, Araujo JM, Carvalho RO, Silva AR. Efeito do fungo Paecilomyces lilacinus sobre ovos de Taenia saginata. Rev Soc Bras Med Trop. 2008; 41(6): 686-8.
15. O’Hara CM, Jatala P. Ultraestructure of Meloydogine, Globoderaand Nacobus eggs shells as related to the activities of biocontrol fungi. J Nematol. 1985; 17(1):508.
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