Resumo
Cerca de 7% da população bacteriana do solo está representado por bactérias Gram-negativas aeróbias/anaeróbias facultativas. Muitas espécies são patogênicas e estão envolvidas em casos de infecções hospitalares. O potencial de patogenicidade dessas bactérias pode ser avaliado através da investigação da sua resistência a antimicrobianos. Além deste propósito, o objetivo do trabalho foi também identificar bacilos gram-negativos (BGN) isolados do solo. Para isso, 18 amostras de solo foram semeadas em caldo de Hajna. A obtenção de colônias isoladas seguiu-se em Mc Conkey ágar e Mueller Hinton ágar com 5% de sangue de carneiro. Foram repicadas 283 colônias com diferentes características morfológicas, em meio de IAL. Na triagem, obteve-se BGN fermentadores e não fermentadores, cuja identificação se fez pela metodologia convencional. Identificou-se 94,35% de enterobactérias e 5,65% BGN não fermentadores. A resistência bacteriana foi mais expressiva aos antibióticos ampicilina, cefalotina, cefoxitina, amoxicilina com ácido clavulânico e tetraciclina, variando entre 49,82% a 87,28%. Todos os isolados bacterianos foram resistentes a pelo menos um antibiótico, o que demonstra considerável potencial patogênico por constituírem um reservatório de resistência. A associação entre solo e resistência antimicrobiana precisa ser mais estudada. Observações e experimentos adicionais possibilitarão conhecer melhor essa relação e os processos que possam contribuir para a emergência de bactérias resistentes.Referências
1. Sagardoy MA, Salerno C M. Number, distribution, and characterizationof heterotrophic bacteria in some Argentine soils. An Edafol Agrobiol1983; 42: 269-81.
2. Cuppels D, Kelman A. Evaluation of seletive media for isolation ofsoft-rot bacteria from soil and plant tissue. Phytopathology 1973;64:468-75.
3. Gilligan PH, Whittier S. Burkholderia, Stenotrophomonas, Ralstonia,Brevudimonas, Comamonas, and Acidovorax. In: Murray PR et al.Manual of Clinical Microbiology. 7a ed. Washington: ASM Press,1999. p. 526-38.
4. Holt JG et al. Gram-negative aerobic/microaerophilic rods and cocci.In: Krieg NR, Holt JG, Berget DH, Sneath PHA. Bergey’s Manual ofDeterminative Bacteriology. 9a ed. Baltimore: Williams & Wilkins,1994. p. 71-174.
5. Kiska DL, Gilligan PH Pseudomonas. In: Murray PR et al. Manual ofClinical Microbiology. 7a ed. Washington: ASM Press, 1999. p. 517-25.
6. Schcreckenberger PC, von Graevenitz A. Acinetobacter,Achromobacter, Alcaligenes, Moraxella, Methylobacterium, and OtherNonfermentative Gram-Negative Rods. In: Murray PR et al. Manualof Clinical Microbiology. 7a ed. Washington: ASM Press, 1999. p.539-60.
7. Farmer III J J. Enterobacteriaceae: Introduction and identification.In: Murray PR et al. Manual of Clinical Microbiology. 7a ed.Washington: ASM Press, 1999. p. 442-58.
8. Koneman EW et al. Enterobacteriaceae. In Koneman EW, Allen SD,Janda WM, Schereckenber PC. Diagnóstico Microbiológico: Texto eAtlas Colorido. 2a ed. S. Paulo: Panamericana, 1993. p.61 - 132.
9. Holding AJ. The proporties and classification of the predominantGram-negative bacteria occurring in soil. J Appl Bacteriol 1960; 23(3):515-25.
10. Abbott S. Klebsiella, Enterobacter, Citrobacter, and Serratia. In: MurrayPR et al. Manual of Clinical Microbiology. 7a ed. Washington: ASMPress; 1999. p. 475-82.
11. Goñi-Urriza M et al. Impact of an Urban Effluent on AntibioticResistance of Riverine Enterobacteriaceae and Aeromonas spp. ApplEnviron Microbiol 2000; 66 (1):125-32.
12. Difco: DifcoManual - Medios de cultivo deshidratados y reactivos paramicrobiologia. 10a ed. Madrid: Graficas letra, S. A., 1984. 1166 pp.
13. Pessoa GVA, Silva EAM. Meios de Rugai e Lisina-Motilidadecombinados em um só tubo para identificação presuntiva deenterobactérias. Rev Inst Adolfo Lutz 1972; 32: 97-100.
14. Koneman EW et al. Bacilos Gram negativos não fermentadores. In:Koneman EW, Allen SD, Janda WM, Schereckenber PC. DiagnósticoMicrobiológico: Texto e Atlas Colorido. 2a ed. S. Paulo: Panamericana,1993. p. 133 - 97.
15. Sneath PHA. Bacterial classification. II. Numerical taxonomy. In:Krieg NR et al.Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology. vol. 1.Baltimore: Williams & Wilkins, 1984. p. 5-7.
16. National Committee for Clinical Laboratory Standards. Performancestandards for antimicrobial disk susceptibility tests. Approved standardM2-A6. NCCLS, Wayne, Pa. 1997.
17. National Committee for Clinical Laboratory Standards. Performancestandards for antimicrobial disk susceptibility testing; FourteenthInformational Supplement. Approved standard M 100-S14. NCCLS,Wayne, Pa. 2004.
18. Jorgensen JH et al. Antibacterial susceptibility tests: dilution and diskdiffusion methods. In: Murray PR et al. Manual of ClinicalMicrobiology. 7a ed. Washington: ASM Press, 1999. p. 1526-43.
19. Khachatourians GG et al. Agricultural use of antibiotics and the evolutionand transfer of antibiotic-resistant bacteria. Can Med Assoc J 1998;59: 1129-36.
20. Meng J et al. Antibiotic resistance of Escherichia coli O157:H7 andO157:NM isolated from animals, food, and humans. J Food Prot1998; 61: 1511-4.
21. Guardabassi L et al. Antibiotic resistance in Acinetobacter spp. isolatedfrom sewers receiving waste effluent from a hospital and apharmaceutical plant. Appl Environ Microbiol 1998; 64:3499-502.
22. Österblad M et al. Antimicrobial susceptibility of Enterobacteriaceaeisolated from vegetables. J Antimicrob Chemother 1999; 43: 503-9.
23. Timko J, Kmeê V. Susceptibility of Enterobacteriaceae from theAlpine Accentor Prunella collaris. Acta Vet. Brno 2003; 72: 285-8.
24. Calva JJ, Sufuentes–Osonio J, Ceren C. Antimicrobial resistance infecal flora: longitudinal community-based surveillance of children fromurban México. Anticrob Agents Chemother 1996; 40:1699-702.
25. Wenzel RP et al. In Vitro Susceptibilities of Gram-Negative BacteriaIsolated from Hospitalized Patients in Four European Countries,Canada, and the United States in 2000-2001 to Expanded-SpectrumCephalosporins and Comparator Antimicrobials: Implications forTherapy. Antimicrob Agents Chemother 2003;47: 3089-98.
26. Schmidt AS et al. Occurrence of antimicrobial resistance in fish-pathogenic and environmental bacteria associated with four Danishrainbow trout farms. Appl Environ Microbiol 2000; 66: 4908-15.
27. Arvanitidou M, Katsouyannopoulos V, Tsakris A. Antibiotic resistancepatterns of enterococci isolated from coastal bathing waters. J MedMicrobiol 2001; 50:1001-5.
28. Lobova TI et al. Geographical and seasonal distribution of multipleantibiotic resistance of heterotrophic bacteria of Lake Shira. AquaticEcology 2002; 36: 299-307.
29. Martínez JL et al. Resistance to betalactam/clavulanate. Lancet 1987;2: 147-53.
30. Page JWJ, Farmer TH, Elson SW. Hyperproduction of TEM-1 b-lactamase by Escherichia coli strains. J Antimicrob Chemother 1989;23: 160-1.
31. Visalli MA, Jacobs MR, Appelbaum PC. Susceptibilities of non-Pseudomonas aeruginosa Gram-negative nonfermentative rods tociprofloxacin, ofloxacin, levofloxacin, D-ofloxacin, sparfloxacin, ceftazidime, piperacillin, piperacillin-tazobactam, trimethoprim-sulfamethoxazole, and imipenem. Antimicrob Agents Chemother 1996;40: 772-5.
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Copyright (c) 2005 Paulo da Silva, Ana Maria Machado Carneiro, Maria Claudia Carloni, Marta Inês Cazentini Medeiros, Jaqueline Otero Silva, Silvia Helena Chinarelli Reche, Maria Clarice Errera, Suzel Nogueira Neme