Cultura primária de fibrocondrócitos de menisco de coelho
v. 64 n. 2 (2005), ARTIGO ORIGINAL
v. 64 n. 2 (2005)

Cultura primária de fibrocondrócitos de menisco de coelho

ARTIGO ORIGINAL
https://doi.org/10.53393/rial.2005.64.32994
Publicado 2005-02-10
Cristina Adelaide Figueiredo
Instituto Adolfo Lutz , Seção de Vírus Produtores de Exantema, São Paulo, SP
Paulo Pinto Joazeiro
Universidade Estadual de Campinas, Instituto de Biologia, Departamento de Histologia e Embriologia, Campinas, SP
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Palavras-chave

cultura de célula
menisco
fibrocondrócitos

Como Citar

1.
Figueiredo CA, Joazeiro PP. Cultura primária de fibrocondrócitos de menisco de coelho. Rev Inst Adolfo Lutz [Internet]. 10º de fevereiro de 2005 [citado 29º de abril de 2024];64(2):263-8. Disponível em: https://periodicos.saude.sp.gov.br/RIAL/article/view/32994
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Resumo

Estudos envolvendo a obtenção de fibrocondrócitos em cultura no Brasil são escassos. Este trabalho descreve a cultura primária de fibrocondrócitos de menisco cultivados em alta densidade com algumas modificações nos métodos de extração já descritos na literatura, com o intuito de obter um maior número de células viáveis para cultivo celular. Foram utilizados meniscos de coelhos New Zealand com 120 dias. Os meniscos foram cortados e tratados com 2mg/ml de colagenase diluída em meio DMEM (meio de Eagle modificado por Dulbeccos) contendo 10% de SFB sob agitação durante três horas a 37ºC. Os fibrocondrócitos foram cultivados em alta densidade (1x105/cm2) em frascos de cultura T25 em meio DMEM suplementado com 10% de SFB. As células atingiram a confluência celular após o 15º dia de cultivo e sintetizaram sua matrix extracelular evidenciada pela coloração com azul de toluidina. A curva de crescimento mostrou que os fibrocondrócitos duplicaram 2,5 vezes. A cinética de incorporação de sulfato radioativo nos glicosaminoglicanos sintetizados pelos fibrocondrócitos "in vitro" foi constante. Os fibrocondrócitos cultivados em alta densidade celular apresentaram aspectos ultra-estruturais semelhante as células " in vivo".
https://doi.org/10.53393/rial.2005.64.32994
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Referências

1. Junqueira LCU, Carneiro J. Tecido cartilaginoso In: Histologia Básica. Ed Guanabara Koogan, 1995. p.94 -100

2. Ghadially FN, Thomas I, Yong N, Lalond J.J. Ultrastructure of rabbitsemilunar cartilage. J Anat1978;125: 499-517.

3. Ghosh P, Taylor KF. The knee joint meniscus. Clin Orthop Rel Res1987; 224: 52-63.

4. Mcdevitt CA, Webber RJ. The ultrasctruture and biochemistry of meniscal cartilage. Clin Orthop 1990; 252: 8-18.

5. Eyre DR, Wu JJ. Collagen of fibrocartilage: A distinctive molecular phenotype in bovine meniscus. Febbs Lett 1983; 158: 265-70.

6. Roughley PJ, McNicol K, Santer V, Buckwalter J. The presence of acartilage like proteoglycan in the adult human meniscus. Biochem J1981; 197: 77-83.

7. Roughley PJ, White RJ. The dermatan sulfate proteoglycans of theadult human meniscus. J Orthop Res 1992; 10: 631-7.

8. Calvo E, Palácios I, Delgado E, Ruiz-Cabello J, Hernandez P, Sanchez-Pernaute O, Egido J, Herrero-Beaumong. High resolution MRI detectscartilage swelling at the early stages of experimental osteoarthritis. Osteoarthrt Cartil 2001; 9: 463-72.

9. Brittberg M, Nilsson A, Ohlsson C, Isaksson O, Peterson L. Treatmentof deep cartilage defects in the knee with autologus chondrocytetransplantation. N Engl J Med1994;331: 889-95.

10. Mueller SM, Shortkroff S, Schneider TO, Breinan HA, Yannas IV,Spector M. Meniscus cells seeded in type I and type II collagen – GAGmatrices in vitro. Biomaterials 1999; 20: 701-09.

11. Pangborn CA, Syriacos AA. Growth factors and fibrochondrocytes inscaffolds. Journal Orthopaedic Research 2005; 23: 1184-90.

12. Green PWB, Fox RR, Sokolof F. Spontaneous degenerative spinaldisease in the laboratory rabbit. J Orthop Res 1984; 2: 161-8.

13. Benya PD, Shaffer JK. Dedifferentiated chondrocytes reexpress thedifferentiated collagen phenotype when cultured in agarose gels. Cell1982;30: 215-24.

14. Freshney RI. Culture of animal cells: a manual of basic techniques. 4°ed. New York, 2000

15. Watson ML. Staining of tissue sections for electron microscopy withheavy metals. J Byphys Biochem Cytol 1958; 4: 475-8.

16. Reynolds ES. The use of lead citrate at high pH as an electron opaquestain in electron microscopy 1963; 17: 208-12.

17. Graverand MP, Ou Y, Schield-Yee T, Barclay L, Hard D, Natsume T, Rattner JB.The cells of the rabbit meniscus their arrangement, interrelationship, morphological variationsand cytoarchitecture. JAnat2001; 198: 525-35.

18. Isoda K, Saito S. In vitro and in vivo fibrochondrocytes growthbehaviour in fibrin gel na immuno histochemical study in the rabbit.Am J Knee Surg 1998; 11: 209-16.

19. Abercombie M, Heaysman JEM. Observation on the social behaviourof cells in tissue culture. II monolayering of fibroblasts. Exp Cell Res1981; 6: 293-306.

20. Webber RJ. In vitro culture of meniscal tissue. Clin Orthop Relat Res1990; 252: 114-20.

21. Webber RJ, Hough AJ JR. Serum-free culture of rabbit meniscal fibrochondrocytes proliferative response J Orthop Res 1988; 6(1):13-8.

22. Webber RJ, Hough AJ JR. Cell culture of rabbit meniscal fibrochondrocytes II. Sulfated proteoglycan synthesis. 1988; Biochimie70: 193-204.

23. Webber RJ, Zitaglio T, Hough AJ JR. In vitro cell proliferation and proteoglycan synthesis of rabbit meniscal fibrochondrocytes as afunction of age and sex. Arthritis and Rheumatism 1986; 29: 1010-6.

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Copyright (c) 2005 Cristina Adelaide Figueiredo, Paulo Pinto Joazeiro

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