Palavras-chave
bactéria
produtos de higiene pessoal
desinfecção
patógenos
produtos de higiene pessoal
desinfecção
patógenos
Como Citar
1.
Rossi EM, Possai J, Honorato JFB. Esponjas de banho: promovem limpeza ou podem ser reservatório e veículo de transmissão de microrganismos?. Rev Inst Adolfo Lutz [Internet]. 30º de setembro de 2020 [citado 25º de dezembro de 2024];79(1):1-10. Disponível em: https://periodicos.saude.sp.gov.br/RIAL/article/view/36024
Resumo
As esponjas de banho podem carrear contaminação, pois sua estrutura favorece a multiplicação
microbiana. Desse modo, o objetivo deste trabalho foi verificar a eficiência de dois métodos de
desinfecção para diminuir a quantidade de microrganismos de importância clínica nas esponjas de
banho. Foram analisadas 30 esponjas de banho (15 vegetais e 15 sintéticas) que foram cortadas em
três partes iguais. Uma delas serviu como controle. As demais partes foram submetidas à desinfecção
por fervura durante cinco minutos e à imersão em hipoclorito de sódio 200 ppm. Os resultados
demonstraram média de contaminação de bactérias heterotróficas de 4,1 LogUFC/mL e
4,7 LogUFC/mL, para as vegetais e sintéticas, respectivamente. A maioria (80%) das esponjas
(10 sintéticas e 14 vegetais) apresentou contaminação por microrganismos de importância clínica.
Os métodos de desinfecção reduziram as contagens de bactérias heterotróficas em 3,3 LogUFC/mL com
fervura durante cinco minutos e 1,8 LogUFC/mL com desinfecção em hipoclorito de sódio 200 ppm.
Conclui-se, portanto, que as esponjas de banho possuem contaminação microbiológica de
importância clínica e que a fervura por cinco minutos é um método de fácil execução, baixo custo
e capaz de controlar a quantidade de bactérias nas esponjas utilizadas para banho, reduzindo a
disseminação de doenças.
Referências
1. Bottone EJ, Perez AA. Pseudomonas aeruginosa
folliculitis acquired through use of a contaminated
loofah sponge: an unrecognized potential public
health problem. J Clin Microbiol. 1993;31(3):480-3.
https://dx.doi.org/10.1128/JCM.31.3.480-483.1993
2. Frenkel LM. Pseudomonas folliculitis from sponges
promoted as beauty aids. J Clin Microbiol. 1993;31(10):2838.
https://dx.doi.org/10.1128/JCM.31.10.2838-.1993
3. Bottone EJ, Perez AA, Oeser JL. Loofah sponges
as reservoirs and vehicles in the transmission of
potentially pathogenic bacterial species to human
skin. J Clin Microbiol. 1994;32(2):469-72. https://
dx.doi.org/10.1128/JCM.32.2.469-472.1994
4. Nogueira AA, Cunha Neto Rd, Siliano PR. Análise
bacteriológica de esponjas de banho em uso e métodos de
desinfecção. Rev Sci Health. 2014;5(2):56-60. Disponível
em: http://arquivos.cruzeirodosuleducacional.edu.
br/principal/new/revista_scienceinhealth/14_mai_
ago_2014/Science_05_02_2014.pdf
5. Rossi EM. Avaliação da contaminação microbiológica
e de procedimentos de desinfecção de esponjas
utilizadas em serviços de alimentação [dissertação de
mestrado]. Porto Alegre (RS): Universidade Federaldo Rio Grande do Sul; 2010.
Disponível em: https://www.lume.ufrgs.br/handle/10183/24854
6. Maniatis AN, Karkavitsas C, Maniatis NA, Tsiftsakis
E, Genimata V, Legakis NJ. Pseudomonas aeruginosa
folliculitis due to non-O:11 serogroups: acquisition
through use of contaminated synthetic sponges. Clin
Infect Dis. 1995;21(2):437-9. https://doi.org/10.1093/
clinids/21.2.437
7. Oliveira F, Melo LD, Cerca N. Relationship between
biofilm formation and antibiotic resistance in commensal
isolates of Staphylococcus epidermidis. V International
Conference on Environmental, Industrial and Applied
Microbiology - BioMicroWorld; 2013 october; Madrid
(Spain): Abstracts in Proceedings. p. 583.
8. Duah M. Daptomycin for methicillin-resistant
Staphylococcus epidermidis native-valve endocarditis:
a case report. Ann Clin Microbiol Antimicrob.
2010;9(9):1-4. https://doi.org/10.1186/1476-0711-9-9
9. Jung K, Lüthje P, Lundahl J, Brauner A. Low
immunogenicity allows Staphylococcus epidermidis to
cause PD peritonitis. Perit Dial Int. 2011;31(6):672-8.
https://dx.doi.org/10.3747/pdi.2009.00150
10. Pinheiro L. Staphylococcus epidermidis e Staphylococcus
haemolyticus: detecção de genes codificadores de
biofilme, toxinas, resistênciaaantimicrobianosetipagem
clonal em isolados de hemoculturas [dissertação de
mestrado]. Botucatu (SP): Universidade Estadual
Paulista; 2014. Disponívl em: https://repositorio.
unesp.br/bitstream/handle/11449/110357/000783734.
pdf?sequence=1&isAllowed=y
11. Vasconcelos MA, Santos HS, Bandeira PN, Albuquerque
MR, Carneiro VA, Cavada BS. Prophylactic outcomes
of casbane diterpene in Candida albicans and Candida
glabrata biofilms. II International Conference on
Antimicrobial Research - ICAR; 2012 november;
Lisboa (PT): Abstracts in Proceedings. p. 321.
12. Centers for Disease Control and Prevention - CDC.
Staphylococcus aureus in Healthcare Settings. [acesso
2017 Mai 5]. Disponível em: http://www.cdc.gov/
HAI/organisms/staph.html
13. Lopes VK, Pereira SO, Castro ASB, Esperidião AV,
Oliveira IS, Pereira JL et al. Infecções multirresistentes
por Staphylococcus aureus: tratamento e profilaxia. J
Bras Med. 2014;102(4):21-8.
14. Pereira SG. Pseudomonas aeruginosa em ambiente
termal: prevalência e determinantes de patogenicidade
[tese doutorado]. Coimbra (PT): Universidade de
Coimbra; 2013. Disponível em: http://hdl.handle.
net/10316/23959
15. Centers for Disease Control and Prevention - CDC.
Pseudomonas aeruginosa in Healthcare Settings.
[acesso 2017 Mai 10]. Disponível em: https://www.
cdc.gov/hai/organisms/pseudomonas.html
16. Santos LL. Características da microbiota da superfície
ocular bacteriana em animais domésticos e silvestres
[dissertação de mestrado]. Curitiba (PR): Universidade
Federal do Paraná; 2012. Disponível em: https://
acervodigital.ufpr.br/handle/1884/25611?show=full
17. Gow NA, van de Veerdonk FL, Brown AJ, Netea MG.
Candida albicans morphogenesis and host defence:
discriminating invasion from colonization. Nat
Rev Microbiol. 2011;10(2):112-22. https://dx.doi.
org/10.1038/nrmicro2711
18. Mason KL, Downward JR, Mason KD, Falkowski
NR, Eaton KA, Kao JY et al. Candida albicans and
bacterial microbiota interactions in the cecum during
recolonization following broad-spectrum antibiotic
therapy. Infect Immun. 2012;80(10):3371-80. https://
dx.doi.org/10.1128/IAI.00449-12
19. Andrade JT, de Morais SE, Ferreira JMS, de Freitas
Araújo MG. Avaliação do potencial antifúngico de
compostos isolados de plantas frente a espécies de
C. albicans. V Jornada Acadêmica Internacional da
Bioquímica; janeiro de 2015; São Paulo: Blucher
Biochemistry Proceedings. 2015;1(1):85-6. Disponível
em: http://pdf.blucher.com.br.s3-sa-east-1.amazonaws.
com/biochemistryproceedings/v-jaibqi/0088.pdf
20. Kashem SW, Igyártó BZ, Gerami-Nejad M, Kumamoto
Y, Mohammed JA, Jarrett E, et al. Candida albicans
morphology and dendritic cell subsets determine T
helper cell differentiation. Immunity. 2015;42(2):356-
66. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2015.01.008
21. Cox GM, Perfect JR. Infections due to Trichosporon
species and Blastoschizomyces capitatus (Saprochaete
capita). UpToDate. [internet]. [cited 2017 May 21].
Disponível em: https://www.uptodate.com/contents/
infections-due-to-trichosporon-species-and-blastoschizomyces-
capitatus-saprochaete-capitata
22. Saxena S, Uniyal V, Bhatt RP. Inhibitory effect of essentialoils
against Trichosporon ovoides causing Piedra Hair
Infection. Braz J Microbiol. 2012; 43(4):1347-54.
http://doi.org/10.1590/S1517-83822012000400016
23. Kurtzman C, Fell JW, Boekhout T, editors. The Yeasts:
a taxonomic study. 5.ed. USA: Elsevier Science; 2011.
24. Liu Y, Ma S, Wang X, Xu W, Tang J. Cryptococcus
albidus encephalitis in newly diagnosed HIV-patient
and literature review. Med Mycol Case Rep. 2013;
3:8-10. http://doi.org/10.1016/j.mmcr.2013.11.002
25. Wirth F, Goldani LZ. Epidemiology of
Rhodotorula: an emerging pathogen. Interdiscip
Perspect Infect Dis. 2012; 2012(1):465717. http://
doi.org/10.1155/2012/465717
26. Jorge AC. Doença de Marchiafava-Bignami: uma
rara entidade com prognóstico sombrio. Rev Bras Ter
Intensiva. 2013;25(1):68-72. https://doi.org/10.1590/
S0103-507X2013000100013
27. Coelho FA, Lopes SP, Pereira MO. Effective association
of tea tree essential oil with conventional antibiotics
to control Pseudomonas aeruginosa biofilms. Biofilms
5th International Conference; 2012 december; Paris.
p. 157 [abstract]. Disponível em: http://hdl.handle.
net/1822/28611
28. Corazza M, Carla E, Rossi MR, Pedna MF, Virgili
A. Face and body sponges: beauty aids or potential
microbiological reservoir? Eur J Dermatol.
2003;13(6):571-3.
29. Khatri JM, Jadhav MM, Tated GH. Sterilization and
orthodontics: A literature review. Int J Orthod Rehabil.
2017;8:141-6. https//doi.org/10.4103/ijor.ijor_36_17
30. Chávez de Paz LE, Bergenholtz G, Svensäter G.
The effects of antimicrobials on endodontic biofilm
bacteria. J Endod. 2010;36(1):70-7. https://dx.doi.
org/10.1016/j.joen.2009.09.017
31. Enxurreira EM. Propriedades e aplicações do
hipoclorito de sódio em endodontia [monografia].
Porto (PT): Universidade Fernando Pessoa; 2010.
Disponível em: http://hdl.handle.net/10284/1925
32. Nascimento MS, Silva N. Tratamentos químicos
na sanitização de morango (Fragaria vesca L.).
Braz J Food Technol. 2010; 13(1):11-7. https://doi.
org/10.4260/BJFT2010130100002
33. Rossi EM, Scapin D, Grando WF, Tondo EC.
Microbiological contamination and disinfection
procedures of kitchen sponges used in food services.
Food Nutr Sci. 2012;3(7):975–80. http://dx.doi.
org/10.4236/fns.2012.37129
34. 3Ikawa JY, Rossen JS. Reducing bacteria in household
sponges. J Environ Health. 1999; 62(1):18-22.
35. Sharma M, Eastridge J, Mudd C. Effective household
disinfection methods of kitchen sponges. Food
Control. 2009;20(3):310-3. http://dx.doi.org/10.1016/j.
foodcont.2008.05.020
36. Lopes MT. Caracterização microbiológica de matérias
primas e validação do binómio tempo x temperatura
de esterilização de preparados alimentares [mestrado].
Lisboa (PT): Universidade Católica Portuguesa; 2013.
Disponível em: http://hdl.handle.net/10400.14/16166
folliculitis acquired through use of a contaminated
loofah sponge: an unrecognized potential public
health problem. J Clin Microbiol. 1993;31(3):480-3.
https://dx.doi.org/10.1128/JCM.31.3.480-483.1993
2. Frenkel LM. Pseudomonas folliculitis from sponges
promoted as beauty aids. J Clin Microbiol. 1993;31(10):2838.
https://dx.doi.org/10.1128/JCM.31.10.2838-.1993
3. Bottone EJ, Perez AA, Oeser JL. Loofah sponges
as reservoirs and vehicles in the transmission of
potentially pathogenic bacterial species to human
skin. J Clin Microbiol. 1994;32(2):469-72. https://
dx.doi.org/10.1128/JCM.32.2.469-472.1994
4. Nogueira AA, Cunha Neto Rd, Siliano PR. Análise
bacteriológica de esponjas de banho em uso e métodos de
desinfecção. Rev Sci Health. 2014;5(2):56-60. Disponível
em: http://arquivos.cruzeirodosuleducacional.edu.
br/principal/new/revista_scienceinhealth/14_mai_
ago_2014/Science_05_02_2014.pdf
5. Rossi EM. Avaliação da contaminação microbiológica
e de procedimentos de desinfecção de esponjas
utilizadas em serviços de alimentação [dissertação de
mestrado]. Porto Alegre (RS): Universidade Federaldo Rio Grande do Sul; 2010.
Disponível em: https://www.lume.ufrgs.br/handle/10183/24854
6. Maniatis AN, Karkavitsas C, Maniatis NA, Tsiftsakis
E, Genimata V, Legakis NJ. Pseudomonas aeruginosa
folliculitis due to non-O:11 serogroups: acquisition
through use of contaminated synthetic sponges. Clin
Infect Dis. 1995;21(2):437-9. https://doi.org/10.1093/
clinids/21.2.437
7. Oliveira F, Melo LD, Cerca N. Relationship between
biofilm formation and antibiotic resistance in commensal
isolates of Staphylococcus epidermidis. V International
Conference on Environmental, Industrial and Applied
Microbiology - BioMicroWorld; 2013 october; Madrid
(Spain): Abstracts in Proceedings. p. 583.
8. Duah M. Daptomycin for methicillin-resistant
Staphylococcus epidermidis native-valve endocarditis:
a case report. Ann Clin Microbiol Antimicrob.
2010;9(9):1-4. https://doi.org/10.1186/1476-0711-9-9
9. Jung K, Lüthje P, Lundahl J, Brauner A. Low
immunogenicity allows Staphylococcus epidermidis to
cause PD peritonitis. Perit Dial Int. 2011;31(6):672-8.
https://dx.doi.org/10.3747/pdi.2009.00150
10. Pinheiro L. Staphylococcus epidermidis e Staphylococcus
haemolyticus: detecção de genes codificadores de
biofilme, toxinas, resistênciaaantimicrobianosetipagem
clonal em isolados de hemoculturas [dissertação de
mestrado]. Botucatu (SP): Universidade Estadual
Paulista; 2014. Disponívl em: https://repositorio.
unesp.br/bitstream/handle/11449/110357/000783734.
pdf?sequence=1&isAllowed=y
11. Vasconcelos MA, Santos HS, Bandeira PN, Albuquerque
MR, Carneiro VA, Cavada BS. Prophylactic outcomes
of casbane diterpene in Candida albicans and Candida
glabrata biofilms. II International Conference on
Antimicrobial Research - ICAR; 2012 november;
Lisboa (PT): Abstracts in Proceedings. p. 321.
12. Centers for Disease Control and Prevention - CDC.
Staphylococcus aureus in Healthcare Settings. [acesso
2017 Mai 5]. Disponível em: http://www.cdc.gov/
HAI/organisms/staph.html
13. Lopes VK, Pereira SO, Castro ASB, Esperidião AV,
Oliveira IS, Pereira JL et al. Infecções multirresistentes
por Staphylococcus aureus: tratamento e profilaxia. J
Bras Med. 2014;102(4):21-8.
14. Pereira SG. Pseudomonas aeruginosa em ambiente
termal: prevalência e determinantes de patogenicidade
[tese doutorado]. Coimbra (PT): Universidade de
Coimbra; 2013. Disponível em: http://hdl.handle.
net/10316/23959
15. Centers for Disease Control and Prevention - CDC.
Pseudomonas aeruginosa in Healthcare Settings.
[acesso 2017 Mai 10]. Disponível em: https://www.
cdc.gov/hai/organisms/pseudomonas.html
16. Santos LL. Características da microbiota da superfície
ocular bacteriana em animais domésticos e silvestres
[dissertação de mestrado]. Curitiba (PR): Universidade
Federal do Paraná; 2012. Disponível em: https://
acervodigital.ufpr.br/handle/1884/25611?show=full
17. Gow NA, van de Veerdonk FL, Brown AJ, Netea MG.
Candida albicans morphogenesis and host defence:
discriminating invasion from colonization. Nat
Rev Microbiol. 2011;10(2):112-22. https://dx.doi.
org/10.1038/nrmicro2711
18. Mason KL, Downward JR, Mason KD, Falkowski
NR, Eaton KA, Kao JY et al. Candida albicans and
bacterial microbiota interactions in the cecum during
recolonization following broad-spectrum antibiotic
therapy. Infect Immun. 2012;80(10):3371-80. https://
dx.doi.org/10.1128/IAI.00449-12
19. Andrade JT, de Morais SE, Ferreira JMS, de Freitas
Araújo MG. Avaliação do potencial antifúngico de
compostos isolados de plantas frente a espécies de
C. albicans. V Jornada Acadêmica Internacional da
Bioquímica; janeiro de 2015; São Paulo: Blucher
Biochemistry Proceedings. 2015;1(1):85-6. Disponível
em: http://pdf.blucher.com.br.s3-sa-east-1.amazonaws.
com/biochemistryproceedings/v-jaibqi/0088.pdf
20. Kashem SW, Igyártó BZ, Gerami-Nejad M, Kumamoto
Y, Mohammed JA, Jarrett E, et al. Candida albicans
morphology and dendritic cell subsets determine T
helper cell differentiation. Immunity. 2015;42(2):356-
66. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2015.01.008
21. Cox GM, Perfect JR. Infections due to Trichosporon
species and Blastoschizomyces capitatus (Saprochaete
capita). UpToDate. [internet]. [cited 2017 May 21].
Disponível em: https://www.uptodate.com/contents/
infections-due-to-trichosporon-species-and-blastoschizomyces-
capitatus-saprochaete-capitata
22. Saxena S, Uniyal V, Bhatt RP. Inhibitory effect of essentialoils
against Trichosporon ovoides causing Piedra Hair
Infection. Braz J Microbiol. 2012; 43(4):1347-54.
http://doi.org/10.1590/S1517-83822012000400016
23. Kurtzman C, Fell JW, Boekhout T, editors. The Yeasts:
a taxonomic study. 5.ed. USA: Elsevier Science; 2011.
24. Liu Y, Ma S, Wang X, Xu W, Tang J. Cryptococcus
albidus encephalitis in newly diagnosed HIV-patient
and literature review. Med Mycol Case Rep. 2013;
3:8-10. http://doi.org/10.1016/j.mmcr.2013.11.002
25. Wirth F, Goldani LZ. Epidemiology of
Rhodotorula: an emerging pathogen. Interdiscip
Perspect Infect Dis. 2012; 2012(1):465717. http://
doi.org/10.1155/2012/465717
26. Jorge AC. Doença de Marchiafava-Bignami: uma
rara entidade com prognóstico sombrio. Rev Bras Ter
Intensiva. 2013;25(1):68-72. https://doi.org/10.1590/
S0103-507X2013000100013
27. Coelho FA, Lopes SP, Pereira MO. Effective association
of tea tree essential oil with conventional antibiotics
to control Pseudomonas aeruginosa biofilms. Biofilms
5th International Conference; 2012 december; Paris.
p. 157 [abstract]. Disponível em: http://hdl.handle.
net/1822/28611
28. Corazza M, Carla E, Rossi MR, Pedna MF, Virgili
A. Face and body sponges: beauty aids or potential
microbiological reservoir? Eur J Dermatol.
2003;13(6):571-3.
29. Khatri JM, Jadhav MM, Tated GH. Sterilization and
orthodontics: A literature review. Int J Orthod Rehabil.
2017;8:141-6. https//doi.org/10.4103/ijor.ijor_36_17
30. Chávez de Paz LE, Bergenholtz G, Svensäter G.
The effects of antimicrobials on endodontic biofilm
bacteria. J Endod. 2010;36(1):70-7. https://dx.doi.
org/10.1016/j.joen.2009.09.017
31. Enxurreira EM. Propriedades e aplicações do
hipoclorito de sódio em endodontia [monografia].
Porto (PT): Universidade Fernando Pessoa; 2010.
Disponível em: http://hdl.handle.net/10284/1925
32. Nascimento MS, Silva N. Tratamentos químicos
na sanitização de morango (Fragaria vesca L.).
Braz J Food Technol. 2010; 13(1):11-7. https://doi.
org/10.4260/BJFT2010130100002
33. Rossi EM, Scapin D, Grando WF, Tondo EC.
Microbiological contamination and disinfection
procedures of kitchen sponges used in food services.
Food Nutr Sci. 2012;3(7):975–80. http://dx.doi.
org/10.4236/fns.2012.37129
34. 3Ikawa JY, Rossen JS. Reducing bacteria in household
sponges. J Environ Health. 1999; 62(1):18-22.
35. Sharma M, Eastridge J, Mudd C. Effective household
disinfection methods of kitchen sponges. Food
Control. 2009;20(3):310-3. http://dx.doi.org/10.1016/j.
foodcont.2008.05.020
36. Lopes MT. Caracterização microbiológica de matérias
primas e validação do binómio tempo x temperatura
de esterilização de preparados alimentares [mestrado].
Lisboa (PT): Universidade Católica Portuguesa; 2013.
Disponível em: http://hdl.handle.net/10400.14/16166
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