Palabras clave
orizicultura
Salmonella
Campylobacter
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Resumen
Algumas espécies de aves silvestres têm sido identificadas como reservatórios de Campylobacter e Salmonella, as quais atuam como propagadoras desses micro-organismos; entretanto, não há estudo sobre o papel das aves silvestres na transmissão desses agentes patogênicos no Brasil. O objetivo do presente trabalho foi de verificar a presença desses agentes patogênicos em aves silvestres que se alimentam em lavouras orizícolas. Vinte e três Garibaldis (Chrysomus ruficapillus), uma Rolinha-picuí (Columbina picui) e um Canário-da-terra (Sicalis flaveola) foram capturados com redes de neblina. As amostras de fezes das aves foram coletadas com o uso de zaragatoas e foram processadas para efetuar pesquisa de Campylobacter spp. e Salmonella enterica. Oito (32 %) amostras de fezes de C. ruficapillus foram positivas para Campylobacter e seis (24 %) foram positivas para Salmonella enterica. Cinco (20 %) amostras coletadas de C. ruficapillus e uma de S. flaveola foram positivas para Salmonella. C. ruficapillus e S. flaveola mostraram ser reservatórios de Campylobacter e Salmonella e, consequentemente, podem atuar como potenciais disseminadores destes patógenos. Este é o primeiro registro de isolamento de Campylobacter e Salmonella de amostras de fezes de C. ruficapillus e S. flaveola silvestres.Citas
1. Germano PML, Germano MIS. Agentes bacterianos de toxinfecções. In: Germano PML, Germano, MIS. Higiene e Vigilância Sanitária de Alimentos. 2ª Edição. São Paulo: Editora Varela; 2003, p. 215-75.
2. Centers for Disease Control and Prevention [CDC]. Vital Signs: Incidence and Trends of Infection with Pathogens Transmitted Commonly Through Food - Foodborne Diseases Active Surveillance Network, 10 U.S. Sites, 1996--2010.Morb Mortal Wkly Rep. 2011;60(22):749-55.
3. Brasil. Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Coordenação Geral de Doenças Transmissíveis. Unidade de Doenças de Veiculação Hídrica e Alimentar, 2011. Vigilância Epidemiológica das Doenças de Transmissão Hídrica e Alimentar –VEDTHA. Disponível em: [http://portal.saude.gov.br/portal/arquivos/pdf/10_passos_para_investigacao_surtos.pdf].
4. Kapperud G, Rosef O. Avian wildlife reservoir of Campylobacter fetus subsp. jejuni, Yersinia spp. and Salmonella spp. in Norway. Appl Environ Microbiol. 1983:375-80.
5. Rosef O, Kapperud G, Lauwers S, Gondrosen B. Serotyping of Campylobacter jejuni, Campylobacter coli and Campylobacterlaridis from domestic and wild animals. Appl Environ Microbiol. 1985;49(6):1507-10.
6. Tsiodras S, Kelesidis T, Kelesidis I, Bauchinger U, Falagas ME. Human infection associated with wild birds. J Infect. 2008;56(2):83-98.
7. Dias RA, Burger MI. A assembléia de aves de áreas úmidas em dois sistemas de cultivo de arroz irrigado no extremo sul do Brasil. Ararajuba. 2005;13(1):63-80.
8. Comitê Brasileiro de Registros Ornitológicos [CBRO]. Listas das Aves do Brasil, 10ª ed., 2011. Disponível em: [http://www.cbro.org.br].
9. George HA, Hoffmann PS, Krieg NR, Smimbert RM. Improved media for growth and aerotolerance of Campylobacter fetus. J Clin Microbiol. 1978;8:36-41.
10. Filgueiras ALL, Hofer E. Ocorrência de Campylobacter termofilico em diferentes pontos de uma estação de tratamento de esgotos na cidade do Rio de Janeiro. Rev Microbiol. 1989;20:303-8.
11. Attebery HR, Finegold SM. A miniature anaerobic jar for tissue transport or for cultivation of anaerobes. Am J Clin Pathol.1970;53:383-8.
12. Andrews WH, Jacobson W, Hammack T. Salmonella. U.S. Food and Drug Administration, Bacteriological analytical manual, Chapter 5, 2011. Disponível em: [http://www.fda.gov/Food/FoodScienceResearch/LaboratoryMethods/ucm070149.htm].
13. Gonçalves GAM, Almeida SM, Camossi LG, Langoni H, Andreatti Filho RL. Avaliação sorológica de Parainfluenzavirus tipo 1, Salmonella spp., Mycoplasma spp. e Toxoplasma gondii em aves silvestres. Cienc Anim Bras. 2013:14(4):473-80.
14. Lopes ES, Cardoso WM, Albuquerque AH, Teixeira RSC, Salles RPR, Bezerra WGA, et al. Isolation of Salmonella spp. in captive Psittaciformes from zoos and a commercial establishment of Fortaleza, Brazil. Arq Bras Med Vet Zootec. 2014:66(3):965-8.
15. Santos HF, Flôres ML, Lara VM, Silva MS, Battisti L, Lovato LT.Microbiota cloacal aeróbia de cracídeos cativos no Rio Grande do Sul e sua susceptibilidade a antimicrobianos. Pesq Vet Bras. 2010:30(12):1077-82.
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