Resumen
Alguns micro-organismos causadores de infecções e veiculados por alimentos industrializados são removidos dos mesmos por tratamento térmico ou acidificação, enquanto outros são de difícil eliminação e requerem o uso de conservantes. Assim, acidificou-se meio de cultura TSA (Tripticase-Soja-Agar) com ácido cítrico (pH 3,5 e 5) e acrescentou-se ao mesmo quantidades específicas de metabissulfito de sódio (MBS), benzoato de sódio (BS) e sorbato de potássio (SP). Após inoculação com suspensões aquosas (100μL = 104 células) de Escherichia coli, Bacillus cereus, Salmonella Enteritidis e S. Typhimurium, e incubação por 24-72 h, mensurou-se o número de unidades formadoras de colônias (UFC) nos cultivos, visando obter a concentração mínima de cada conservante capaz de inibir (CIM) os isolados estudados in vitro e fornecer subsídios para sua utilização industrial em quantidades apropriadas. B. cereus foi o isolado mais suscetível a MBS, BS e SP (respectivamente 75, 275 e 750 mg.L-1), seguido por E. coli (respectivamente 75, 350 e 1000mg.L-1). Os isolados de Salmonella foram os mais resistentes, sendo seu crescimento completamente inibido por 1000 mg BS.L-1, mas apenas reduzido por 1250 mg SP.L-1. MBS inibiu totalmente S. Typhimurium a75 mg.L-1 e S. Enteritidis a 200 mg.L-1.
Citas
1. Jay JM. Microbiologia dos Alimentos. 6ª ed. Porto Alegre; Artmed; 2005.
2. Góes LMNB, Mendes PP, Mendes ES, Ribeiro CMF, Silva RPP. Uso do metabissulfi to de sódio no controle de microorganismos em camarões marinhos Litopenaeus vannamei (Boone, 1931). Acta Sci Biol Sci. 2006; 28(2): 153-7.
3. Franco DBGM, Landgraf M. Microbiologia dos Alimentos, 2ª ed. São Paulo; Atheneu; 2005.
4. Banks JG, Board RG. Comparison of methods for examination of free and bound sulphur dioxide in stored British fresh sausage. J Sci Food & Agric. 1982; 33: 197–203.
5. Wibowo D, Eschenbruch R, Davis CR, Fleet GH, Lee TH. Occurrence and growth of lactic acid bacteria in wine - A review. Am J Enol Vitic. 1985; 36: 302.
6. De Jonge R, Takumi K, Ritmeester WS, Leusden FM. The adaptive response of Escherichia coli O157 in an environment with changing pH. J Appl Microbiol. 2003; 94: 555–60.
7. Ghenghesh KS, Belhaj K, El-Amin WB, El-Nefathi SE, Zalmum A. Microbiological quality of fruit juices sold in Tripoli–Libya. Food Contr. 2005; 16: 855–8.
8. Gawande PV, Bhagwat AA. Protective effects of cold temperature and surface-contact on acid tolerance of Salmonella spp. J Appl Microbiol .2002; 93: 689–96.
9. Iha MH, Fávaro RMD, Okada MM, Prado SPT, Martins AMB, Oliveira MA, Febronio LHP, Garrido NS. Avaliação físico-química e higiênico-sanitária do suco de laranja fresco engarrafado e do suco pasteurizado. Rev Inst Adolfo Lutz. 2000; 9: 39-44.
10. Wawase KYF, Coelho GLV, Luchese RH. Uso de conservadores ácido benzóico e benzoato de sódio no controle de Alicyclobacillus acidoterrestris em suco de laranja. Rev Ciên Vida. 2008; 28(2): 53-62.
11. Sugai AY, Shigeoka DS, Badolato GG, Tadini CC. Análise físico-química e microbiológica do suco de laranja minimamente processado armazenado em lata de alumínio. Ciênc Tecnol Aliment. 2002; 22(3): 233-8.
12. Vidal-Martins AMC, Rossi-Jr OD, Rezende-Lago NC. Micro-organismos heterotrófi cos mesófi los e bactérias do grupo do Bacillus cereus em leite integral submetido a ultra alta temperatura. Arq Bras Med Vet Zootec. 2005; 57(3): 396-400.
13. García MT, Lucas R, Abriouel H, Omar NB, Pérez R, Grande MJ, Martinez-Cañhamero M, Gálvez A. Antimicrobial activity of enterocin EJ97 against “Bacillus macroides/Bacillus maroccanus”isolated from zucchini purée. J Appl Microbiol. 2004; 97: 731-7.
14. Teles Fº PA. Asma Brônquica – tipos: asma por sulfi tos. Disponível on-line em: http://www.asmabronquica.com.br/medical/tipos_de_asma_asma_sulfi tos.html.
15. Taylor SL. Why sulfite alternatives? Food Technl. 1993; 47 (10): 14.
16. Taylor SL, Bush RK. Sulfi tes as food ingredients. Food Tech. 1986; 40 (6): 47-52.
17. Taylor SL, Bush RK. Sulfi tes as food ingredients. Food Tech. 1987; 39 (11): 532-6.
18. Tfouni SAV, Toledo MCF. Determination of benzoic and sorbic acids in Brazilian food. Food Control. 2002; 13:117–23.
19. World Health Organization (WHO). Benzoic acid and sodium benzoate. Conc Int Chem Assess Geneva. 2000; Doc 26.
20. Tosi EA, Ré E, Ortega ME, Cazzoli AF. Food preservative based on propolis: Bacteriostatic activity of propolis polyphenols and flavonoids upon Escherichia coli. Food Chem. 2007; 104(3): 1025-9.
21. Statistical analysis system - SAS. SAS user’s guide: statistics [CD-ROM], version 9.1. 6ª ed. Cary: 2003.
22. Brennan M, Le Port G, Pulvirenti A, Gormley R. The effect of sodium metabisulphite on the whiteness and keeping quality of sliced mushrooms. Lebensmittel-Wissenschaft & Techn. 1999; 32(7): 460-3.
23. Frank K, Patel R. Activity of sodium metabisulfite against planktonic and biofi lm Staphylococcus species. Diag Microb & Infec Dis. 2007; 57(4): 355-9.
24. Ostergaard E. Evaluation of the antimicrobial effects of sodium benzoate and dichlorobenzyl alcohol against dental plaque microorganisms: An in vitro study. Acta Odontol Scand. 1994; 52(6): 335-45.
25. Karabay O, Sahin I. In vitro activity of sodium-benzoate against isolates of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. West Indian Med J. 2005; 54(2): 107-9.
26. Karabay O, Kocoglu E, Ince N, Sahan T, Ozdemir D. In vitro activity of sodium-benzoate against clinically relevant Enterococcus faecalis andEnterococcus faecium isolates. The J Microb. 2006; 44(1): 129-31.
27. Crawford RL. Degradation of 3-hydroxybenzoate by bacteria of the genus Bacillus. Appl Microb. 1975; 30(3): 439-44.
28. Kiemer P, Tshisuaka B, Fetzner S, Lingens F. Degradation of benzoate via benzoyl-coenzyme A and gentisate by Bacillus stearothermophilus PK1, and purification of gentisate 1,2-dioxygenase. Biol & Fert of Soils. 1996; 23(3):307-13.
29. Turanta F, Göksungur Y, Dinçer AH, ÜnlütürkA, Güvenç U, ZorluNEE. Effect of potassium sorbate/sodium benzoate on microbial population and fermentation of black olives. J Sci Food & Agric. 1999; 79 (9):1197-202.
30. Lack L. The enzymic oxidation of gentisic acid. Biochem Biophys Acta. 1959; 34: 117-23.
31. Brasil. Resolução RDC nº 3, de 15 de janeiro de 2007 da Agência Nacional de Vigilância Sanitária (ANVISA) do Ministério da Saúde. Aprova o Regulamento Técnico sobre “Atribuição de Aditivos e seus Limites Máximos para a Categoria 3 de Alimentos: Gelados comestíveis”, que consta como Anexo. Diário Oficial da União (DOU), Poder Executivo, Brasília, DF, 17 jan. 2007.
32. Brasil. Resolução RDC nº 3, de 15 de janeiro de 2007 da Agência Nacional de Vigilância Sanitária (ANVISA) do Ministério da Saúde. Aprova o Regulamento Técnico sobre “Atribuição de Aditivos e seus Limites Máximos para a Categoria 13 de Alimentos: Molhos e Condimentos”, que consta como Anexo. Diário Ofi cial da União (DOU), Poder Executivo, Brasília, DF, 17 jan. 2007.
33. Brasil. Resolução RDC nº 3, de 15 de janeiro de 2007 da Agência Nacional de Vigilância Sanitária (ANVISA) do Ministério da Saúde. Aprova o Regulamento Técnico sobre “Atribuição de Aditivos e seus Limites Máximos para a Categoria de Alimentos 16.2: Bebidas Não Alcoólicas, Subcategoria 16.2.2: Bebidas Não Alcoólicas Gaseifi cadas e Não Gaseifi cadas”, que consta como Anexo. Diário Oficial da União (DOU), Poder Executivo, Brasília, DF, 17 jan. 2007.
34. Brasil. Resolução RDC nº 217, de 29 de julho de 2005 da Agência Nacional de Vigilância Sanitária (ANVISA) do Ministério da Saúde. Aprova a Extensão de Uso do Aditivo Dióxido de Enxofre e seus Sais de Cálcio, Sódio e Potássio na Função Conservador em Polpas e Purês de Vegetais de acordo com o Anexo. Diário Oficial da União (DOU), Poder Executivo, Brasília, DF, 1º ago. 2005.
35. Wind CE, Restaino L. Antimicrobial effectiveness of potassium sorbate and sodium benzoate against Zygosaccharomyces bailii in a salsa mayonnaise. J Food Prot. 1995; 58(11): 1257-9.
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
Derechos de autor 2009 Revista del Instituto Adolfo Lutz