Palabras clave
Anacardium humile
Pouteria ramiflora
Brosimum gaudichaudii
Cerrado
Frutos
Pouteria ramiflora
Brosimum gaudichaudii
Cerrado
Frutos
Cómo citar
1.
Carelle JS, Silva GR da, Ribeiro RV, Vicente Neto J, Santos Érica L dos. Composição nutricional de frutos do Cerrado mato grossense: cajuzinho do cerrado (Anacardium humile A.St.-Hil.), curriola (Pouteria ramiflora (Mart.) Radlk.) e inharé (Brosimum gaudichaudii Trécul). Rev Inst Adolfo Lutz [Internet]. 30 de septiembre de 2021 [citado 4 de diciembre de 2024];80:1-8,e37247. Disponible en: https://periodicos.saude.sp.gov.br/RIAL/article/view/37247
Resumen
Este trabalho teve como objetivo a caracterização nutricional (umidade, proteínas, lipídeos, cinzas e açúcares
totais), quantificação do Valor Energético Total (VET) e determinação do teor de carotenoides totais dos
frutos de cajuzinho do cerrado (Anacardium humile A.St.-Hil.), curriola (Pouteria ramiflora (Mart.) Radlk) e
inharé (Brosimum gaudichaudii Trécul), do Cerrado mato grossense. No intuito de oferecer uma alternativa
de dieta nutritiva e incentivar o reaproveitamento de alimentos, foram analisadas polpas e cascas destes
frutos. O cajuzinho do cerrado apresentou expressiva quantidade de carotenoides totais nas polpas (5,95
mg/100g) e cascas (6,55 mg/100g). Já a curriola apresentou um valor considerável de cinzas (0,66%) nas polpas
e mostraram quantidade significativa de Valor Energético Total (80,96 Kcal/100g). O inharé destacou-se por
apresentar elevado teor de proteínas nas cascas (3,76%) e polpas (3,19%). Estes resultados mostraram que
polpas e cascas dos frutos analisados, podem ser utilizadas como fonte de nutrientes ou como ingredientes
na elaboração de novos alimentos com potencial funcional. Este é o primeiro estudo que avalia o potencial
nutricional e carotenoides totais nas cascas destes frutos do Cerrado mato grossense.
Citas
1. Tabela Brasileira de Composição de Alimentos / NEPA - UNICAMP. 4.ed. rev. e ampl. Campinas: NEPA –
UNICAMP; 2011.161p [acesso 2020 Jan 14]. Disponível em:
https://www.cfn.org.br/wp-content/uploads/2017/03/taco_4_edicao_ampliada_e_revisada.pdf
2. Ministério do Meio Ambiente. Bioma Cerrado. [acesso 2020 Jan 14]. Disponível em:
http://www.mma.gov.br/biomas/cerrado
3. Neri-Numa IA, Soriano Sancho RA, Pereira APA, Pastore GM. Small Brazilian wild fruits: Nutrients,
bioactive compounds, health-promotion properties and commercial interest. Food Res Int. 2018;103: 345-60.
https://doi.org/10.1016/j.foodres.2017.10.053
4. Vieira RF, organizador. Frutas nativas da região Centro-Oeste. Brasília: Embrapa Recursos Genéticos e
Biotecnologia; 2006. 320p.
5. Bailão EF, Devilla IA, da Conceição EC, Borges LL. Bioactive Compounds Found in Brazilian Cerrado
Fruits. Int J Mol Sci. 2015;16(10): 23760-83.
https://doi.org/10.3390/ijms161023760
6. Gaino NM, Silva MV. Disponibilidade de carotenoides. J Brazilian Soc Food Nutr. 2012;37(3):227-44.
http://dx.doi.org/10.4322/nutrire.2012.018
7. Milani A, Basirnejad M, Shahbazi S, Bolhassani A. Carotenoids: biochemistry, pharmacology and
treatment. Br J Pharmacol. 2017;174(11):1290–324.
https://doi.org/10.1111/bph.13625
8. Ribeiro RV, Bieski IGC, Balogun SO, Martins DTO. Ethnobotanical study of medicinal plants used by
Ribeirinhos in the North Araguaia microregion Mato Grosso, Brazil. J Ethnopharmacol. 2017;205:69–102.
https://doi.org/10.1016/j.jep.2017.04.023
9. BRASIL. Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária. Cajuzinho-do-cerrado. Caderno do Agente de
Assistência Rural: Brasília; 2017.
10. Rodrigues PM, Dutra Gomes JV, Jamal CM, Cunha-Neto A, Santos ML, Fagg CW et al. Triterpenes from
Pouteria ramiflora (Mart.) Radlk. Leaves (Sapotaceae). Food Chem Toxicol. 2017;109(Pt 2):1063-8.
https://doi.org/10.1016/j.fct.2017.05.026
11. Tuttis K, da Costa DLMG, Nunes HL, Specian AFL, Serpeloni JM, Santos LC et al. Pouteria ramiflora
(Mart.) Radlk. extract: Flavonoids quantification and chemopreventive effect on HepG2 cells. J Toxicol
Environ Health A. 2018;81(16):792-804.
https://doi.org/10.1080/15287394.2018.1491911
12. Land LRB, Borges FM, Borges DO, Pascoal GB. Proximate composition, bioactive compounds and
physico-chemical parameters of mama-cadela (Brosimum gaudichaudii Tréc) from Cerrado Mineiro.
Demetra. 2017;12(2):509-18.
https://doi.org/10.12957/demetra.2017.25465
13. Silva DB, Vieira RF, Cordeiro MCT, Pereira EBC, Pereira AV. Propagação vegetativa de Brosimum
gaudichaudii Tréc. (mama-cadela) por estacas de raízes. Rev Bras Plantas Med. 2011;13(2): 151-6.
https://doi.org/10.1590/S1516-05722011000200005
14. Machado RD, de Morais MC, da Conceição EC, Vaz BG, Chaves AR, Rezende KR. Crude plant extract
versus single compounds for vitiligo treatment: ex vivo intestinal permeability assessment on Brosimum
gaudichaudii Trécul. J Pharm Biomed Anal. 2020;191:113593.
https://doi.org/10.1016/j.jpba.2020.113593
15. Martins FS, Pascoa H, de Paula JR, da Conceição EC. Technical aspects on production of fluid extract
from Brosimum gaudichaudii Trécul roots. Pharmacogn Mag. 2015;11(41):226-31.
https://doi.org/10.4103/0973-1296.149742
16. Porto RGCL, Fett R, Areas JAG, Brandao ACAS, Morgano MA, Soares RAM. Bioactive compounds, antioxidant
activity and minerals of ‘Cajuí’ (Anacardium humile St. Hill) during the ripening. Afr J Agric Res. 2016;11(48):4924-30.
https://doi.org/10.5897/AJAR2016.11455
17. Bonacorsi C, da Fonseca LM, Raddi MS, Kitagawa RR, Vilegas W. Comparison of brazilian plants used
to treat gastritis on the oxidative burst of Helicobacter pylori-stimulated neutrophil. Evid Based Complement
Alternat Med. 2013;2013:851621.
http://dx.doi.org/10.1155/2013/851621
18. De Gouveia NM, de Albuquerque CL, Espindola LS, Espindola FS. Pouteria ramiflora extract inhibits
salivary amylolytic activity and decreases glycemic level in mice. An Acad Bras Cienc. 2013;85(3):1141-8.
https://doi.org/10.1590/S0001-37652013000300016
19. Instituto Adolfo Lutz (São Paulo - Brasil). Métodos físico-químicos para análise de alimentos: normas analíticas
do Instituto Adolfo Lutz. 4. ed. [1. ed. digital]. São Paulo (SP): Instituto Adolfo Lutz; 2008. Disponível em:
http://www.ial.sp.gov.br/resources/editorinplace/ial/2016_3_19/analisedealimentosial_2008.pdf
20. AOAC - ASSOCIATION OF OFFICIAL ANALYTICAL CHEMISTS. Official methods of analysis of the
AOAC International. 19th edition. Washington: AOAC, 2012.
21. Ministério da Saúde (BR). Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Resolução RDC nº 360, de 23 de
dezembro de 2003. Aprova Regulamento Técnico sobre Rotulagem Nutricional de Alimentos Embalados,
tornando obrigatória a rotulagem nutricional. Diário Oficial da União. Brasília, DF, 26 dez 2003. Seção 1(251):33-4.
22. Rodriguez-Amaya, D. A Guide to carotenoids analysis in food. Washington: International Life Sciences
Institute Press; 2001. p.64.
23. Granato D, organizador. Análises químicas: Propriedades funcionais e controle da qualidade de alimentos
e bebidas. Rio de Janeiro: Elsevier; 2016.
24. Rocha MS, Figueiredo RW, Araújo MAM, Moreira-Araújo RSR. Caracterização físico-química e atividade
antioxidante (in vitro) de frutos do Cerrado Piauiense. Rev Bras Frutic. 2013;35(4):933-41.
https://doi.org/10.1590/S0100-29452013000400003
25. Morzelle MC, Bachiega P, Souza EC, Vilas-Boas EVB, Lamounier ML. Caracterização física e química de
frutos de Curriola, Gabiroba e Murici provenientes do cerrado brasileiro. Rev Bras Frutic. 2015;37(1):96-103.
http://dx.doi.org/10.1590/0100-2945-036/14
26. Gomes JC. organizador. Análise Físico-química de Alimentos. Viçosa: UFV; 2011.
27. Shams-White MM, Chung M, Du M, Fu Z, Insogna KL, Karlsen MC et al. Dietary protein and bone
health: a systematic review and meta-analysis from the National Osteoporosis Foundation. Am J Clin Nutr.
2017;105(6):1528–43.
https://doi.org/10.3945/ajcn.116.145110
28. Oliveira VF, Silva FG, Resende EC, Pereira PS, Silva FHL, Egea MB. Physicochemical characterization
of ‘Cerrado’ cashew (Anacardium othonianum Rizzini) fruits and pseudofruits. J Sci Food Agric. 2019;
99(14):6199-208.
https://doi.org/10.1002/jsfa.9892
29. Oliveira CK, organizador. Jatobá do cerrado: composição nutricional e beneficiamento dos frutos.
Planaltina-DF: Embrapa Cerrados; 2010.
30. FIB- Food Ingredients Brasil. Lipídios e suas principais funções. Food ingredientes Brasil. 2016;37:64-70.
Disponível em:
https://revista-fi.com/upload_arquivos/201606/2016060302199001466684258.pdf
31. Pereira Freire JA, Barros KBNT, Lima LKF, Martins JM, Araujo YC, da Silva Oliveira GL et al.
Phytochemistry Profile, Nutritional Properties and Pharmacological Activities of Mauritia flexuosa. J Food
Sci. 2016;81(11):2611-22.
https://doi.org/10.1111/1750-3841.13529
32. Lima A, Silva AMO, Trindade RA, Torres RP, Mancini-Filho J. Composição química e compostos
bioativos presentes na polpa e na amêndoa do pequi (Caryocar brasiliense, Camb.). Rev Bras Frutic.
2007;29(3):695-8.
https://doi.org/10.1590/S0100-29452007000300052
33. Dabbou S, Maatallah S, Castagna A, Guizani M, Sghaeir W, Hajlaloui H. Carotenoids, Phenolic Profile,
Mineral Content and Antioxidant Propernosties in Flesh and Peel of Prunus persica Fruits during Two
Maturation Stages. Plant Foods Hum Nutr. 2017;72(1):103-10.
https://doi.org/10.1007/s11130-016-0585-y
UNICAMP; 2011.161p [acesso 2020 Jan 14]. Disponível em:
https://www.cfn.org.br/wp-content/uploads/2017/03/taco_4_edicao_ampliada_e_revisada.pdf
2. Ministério do Meio Ambiente. Bioma Cerrado. [acesso 2020 Jan 14]. Disponível em:
http://www.mma.gov.br/biomas/cerrado
3. Neri-Numa IA, Soriano Sancho RA, Pereira APA, Pastore GM. Small Brazilian wild fruits: Nutrients,
bioactive compounds, health-promotion properties and commercial interest. Food Res Int. 2018;103: 345-60.
https://doi.org/10.1016/j.foodres.2017.10.053
4. Vieira RF, organizador. Frutas nativas da região Centro-Oeste. Brasília: Embrapa Recursos Genéticos e
Biotecnologia; 2006. 320p.
5. Bailão EF, Devilla IA, da Conceição EC, Borges LL. Bioactive Compounds Found in Brazilian Cerrado
Fruits. Int J Mol Sci. 2015;16(10): 23760-83.
https://doi.org/10.3390/ijms161023760
6. Gaino NM, Silva MV. Disponibilidade de carotenoides. J Brazilian Soc Food Nutr. 2012;37(3):227-44.
http://dx.doi.org/10.4322/nutrire.2012.018
7. Milani A, Basirnejad M, Shahbazi S, Bolhassani A. Carotenoids: biochemistry, pharmacology and
treatment. Br J Pharmacol. 2017;174(11):1290–324.
https://doi.org/10.1111/bph.13625
8. Ribeiro RV, Bieski IGC, Balogun SO, Martins DTO. Ethnobotanical study of medicinal plants used by
Ribeirinhos in the North Araguaia microregion Mato Grosso, Brazil. J Ethnopharmacol. 2017;205:69–102.
https://doi.org/10.1016/j.jep.2017.04.023
9. BRASIL. Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária. Cajuzinho-do-cerrado. Caderno do Agente de
Assistência Rural: Brasília; 2017.
10. Rodrigues PM, Dutra Gomes JV, Jamal CM, Cunha-Neto A, Santos ML, Fagg CW et al. Triterpenes from
Pouteria ramiflora (Mart.) Radlk. Leaves (Sapotaceae). Food Chem Toxicol. 2017;109(Pt 2):1063-8.
https://doi.org/10.1016/j.fct.2017.05.026
11. Tuttis K, da Costa DLMG, Nunes HL, Specian AFL, Serpeloni JM, Santos LC et al. Pouteria ramiflora
(Mart.) Radlk. extract: Flavonoids quantification and chemopreventive effect on HepG2 cells. J Toxicol
Environ Health A. 2018;81(16):792-804.
https://doi.org/10.1080/15287394.2018.1491911
12. Land LRB, Borges FM, Borges DO, Pascoal GB. Proximate composition, bioactive compounds and
physico-chemical parameters of mama-cadela (Brosimum gaudichaudii Tréc) from Cerrado Mineiro.
Demetra. 2017;12(2):509-18.
https://doi.org/10.12957/demetra.2017.25465
13. Silva DB, Vieira RF, Cordeiro MCT, Pereira EBC, Pereira AV. Propagação vegetativa de Brosimum
gaudichaudii Tréc. (mama-cadela) por estacas de raízes. Rev Bras Plantas Med. 2011;13(2): 151-6.
https://doi.org/10.1590/S1516-05722011000200005
14. Machado RD, de Morais MC, da Conceição EC, Vaz BG, Chaves AR, Rezende KR. Crude plant extract
versus single compounds for vitiligo treatment: ex vivo intestinal permeability assessment on Brosimum
gaudichaudii Trécul. J Pharm Biomed Anal. 2020;191:113593.
https://doi.org/10.1016/j.jpba.2020.113593
15. Martins FS, Pascoa H, de Paula JR, da Conceição EC. Technical aspects on production of fluid extract
from Brosimum gaudichaudii Trécul roots. Pharmacogn Mag. 2015;11(41):226-31.
https://doi.org/10.4103/0973-1296.149742
16. Porto RGCL, Fett R, Areas JAG, Brandao ACAS, Morgano MA, Soares RAM. Bioactive compounds, antioxidant
activity and minerals of ‘Cajuí’ (Anacardium humile St. Hill) during the ripening. Afr J Agric Res. 2016;11(48):4924-30.
https://doi.org/10.5897/AJAR2016.11455
17. Bonacorsi C, da Fonseca LM, Raddi MS, Kitagawa RR, Vilegas W. Comparison of brazilian plants used
to treat gastritis on the oxidative burst of Helicobacter pylori-stimulated neutrophil. Evid Based Complement
Alternat Med. 2013;2013:851621.
http://dx.doi.org/10.1155/2013/851621
18. De Gouveia NM, de Albuquerque CL, Espindola LS, Espindola FS. Pouteria ramiflora extract inhibits
salivary amylolytic activity and decreases glycemic level in mice. An Acad Bras Cienc. 2013;85(3):1141-8.
https://doi.org/10.1590/S0001-37652013000300016
19. Instituto Adolfo Lutz (São Paulo - Brasil). Métodos físico-químicos para análise de alimentos: normas analíticas
do Instituto Adolfo Lutz. 4. ed. [1. ed. digital]. São Paulo (SP): Instituto Adolfo Lutz; 2008. Disponível em:
http://www.ial.sp.gov.br/resources/editorinplace/ial/2016_3_19/analisedealimentosial_2008.pdf
20. AOAC - ASSOCIATION OF OFFICIAL ANALYTICAL CHEMISTS. Official methods of analysis of the
AOAC International. 19th edition. Washington: AOAC, 2012.
21. Ministério da Saúde (BR). Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Resolução RDC nº 360, de 23 de
dezembro de 2003. Aprova Regulamento Técnico sobre Rotulagem Nutricional de Alimentos Embalados,
tornando obrigatória a rotulagem nutricional. Diário Oficial da União. Brasília, DF, 26 dez 2003. Seção 1(251):33-4.
22. Rodriguez-Amaya, D. A Guide to carotenoids analysis in food. Washington: International Life Sciences
Institute Press; 2001. p.64.
23. Granato D, organizador. Análises químicas: Propriedades funcionais e controle da qualidade de alimentos
e bebidas. Rio de Janeiro: Elsevier; 2016.
24. Rocha MS, Figueiredo RW, Araújo MAM, Moreira-Araújo RSR. Caracterização físico-química e atividade
antioxidante (in vitro) de frutos do Cerrado Piauiense. Rev Bras Frutic. 2013;35(4):933-41.
https://doi.org/10.1590/S0100-29452013000400003
25. Morzelle MC, Bachiega P, Souza EC, Vilas-Boas EVB, Lamounier ML. Caracterização física e química de
frutos de Curriola, Gabiroba e Murici provenientes do cerrado brasileiro. Rev Bras Frutic. 2015;37(1):96-103.
http://dx.doi.org/10.1590/0100-2945-036/14
26. Gomes JC. organizador. Análise Físico-química de Alimentos. Viçosa: UFV; 2011.
27. Shams-White MM, Chung M, Du M, Fu Z, Insogna KL, Karlsen MC et al. Dietary protein and bone
health: a systematic review and meta-analysis from the National Osteoporosis Foundation. Am J Clin Nutr.
2017;105(6):1528–43.
https://doi.org/10.3945/ajcn.116.145110
28. Oliveira VF, Silva FG, Resende EC, Pereira PS, Silva FHL, Egea MB. Physicochemical characterization
of ‘Cerrado’ cashew (Anacardium othonianum Rizzini) fruits and pseudofruits. J Sci Food Agric. 2019;
99(14):6199-208.
https://doi.org/10.1002/jsfa.9892
29. Oliveira CK, organizador. Jatobá do cerrado: composição nutricional e beneficiamento dos frutos.
Planaltina-DF: Embrapa Cerrados; 2010.
30. FIB- Food Ingredients Brasil. Lipídios e suas principais funções. Food ingredientes Brasil. 2016;37:64-70.
Disponível em:
https://revista-fi.com/upload_arquivos/201606/2016060302199001466684258.pdf
31. Pereira Freire JA, Barros KBNT, Lima LKF, Martins JM, Araujo YC, da Silva Oliveira GL et al.
Phytochemistry Profile, Nutritional Properties and Pharmacological Activities of Mauritia flexuosa. J Food
Sci. 2016;81(11):2611-22.
https://doi.org/10.1111/1750-3841.13529
32. Lima A, Silva AMO, Trindade RA, Torres RP, Mancini-Filho J. Composição química e compostos
bioativos presentes na polpa e na amêndoa do pequi (Caryocar brasiliense, Camb.). Rev Bras Frutic.
2007;29(3):695-8.
https://doi.org/10.1590/S0100-29452007000300052
33. Dabbou S, Maatallah S, Castagna A, Guizani M, Sghaeir W, Hajlaloui H. Carotenoids, Phenolic Profile,
Mineral Content and Antioxidant Propernosties in Flesh and Peel of Prunus persica Fruits during Two
Maturation Stages. Plant Foods Hum Nutr. 2017;72(1):103-10.
https://doi.org/10.1007/s11130-016-0585-y
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