Tratamento térmico adequado proporciona melhoria da qualidade nutricional de farinhas de soja elaboradas a partir de novos cultivares destinados à alimentação humana
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Palavras-chave

soja
urease
solubilidade proteica
ácido fítico

Como Citar

1.
Andrade GF, Dantas MI de S, Piovesan ND, Nunes RM, Barros EG de, Costa NMB, Martino HSD. Tratamento térmico adequado proporciona melhoria da qualidade nutricional de farinhas de soja elaboradas a partir de novos cultivares destinados à alimentação humana. Rev Inst Adolfo Lutz [Internet]. 1º de abril de 2010 [citado 30º de abril de 2024];69(4):537-44. Disponível em: https://periodicos.saude.sp.gov.br/RIAL/article/view/32613

Resumo

O efeito do calor seco sobre índices de urease, a solubilidade proteica e a desfosforilação de ácido fítico foram avaliados em grãos de diferentes cultivares de soja. Os grãos foram submetidos à temperatura de 130ºC, 150ºC e 170ºC por 30 minutos e, posteriormente, triturados. Foram realizadas as análises de urease, da solubilidade proteica e dos teores de hexafosfato, pentafosfato, tetrafosfato e trifosfato de inositol. O tratamento a 130ºC foi insuficiente para inativar a atividade da urease e a temperatura de 170°C ultrapassou o limite adequado; os valores desejáveis foram obtidas a 150°C. A solubilidade da proteína diferiu entre as temperaturas aplicadas (p < 0,05). O processamento térmico sob temperatura de 150°C indicou ser adequado por apresentar valores de solubilidade proteica entre 70% a 85%. O teor de hexafosfato de inositol foi 46% menor no cultivar convencional. Ocorreu redução média de 37,7% de IP6 no tratamento dos grãos de soja a 150ºC, quando comparado a de 130ºC. O tratamento térmico a 150ºC por 30 minutos foi o melhor para processar a soja, proporcionar adequada solubilidade proteica na redução da atividade de urease, além de reduzir a concentração de inositóis hexa e pentafosfatos, sem afetar a concentração dos inositóis tetra e trifosfato.
https://doi.org/10.53393/rial.2010.v69.32613
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Referências

1.Wilson TA, Nicolosi RJ, Kotyla T, Fleckinger B. Soy protein without isoflavones reduces aortic total and cholesterol ester concentrations greater than soy protein with isoflavones compared with casein in hypercholesterolemic hamsters. Nutr Res. 2007;27(8):498-504.

2. Bolon YT, Joseph B, Cannon SB, Graham MA, Diers BW, Farmer AD et al. Complementary genetic and genomic approaches help characterize the linkage group I seed protein QTL in soybean. BMC Plant Biol. 2010;3:10-41.

3. Lee SJ, Ahn JK, Khanh TD, Chun SC, Kim SL, Ro HM et al. Comparison of isoflavone concentrations in soybean (glycine max (L.) Merril) sprouts grown under two different light conditions.J Agric Food Chem. 2007;55:9415-21.

4. Xiao CW. Health effects of soy protein and isoflavones in humans. J Nutr. 2008;138:1244S-9S.

5. Martino HSD, Martins BR, Weaver CM, Bressan J, Esteves EA, Costa NMB. Zinc and iron bioavailability of genetically modified soybeans in rats. J Food Sci. 2007;72(9):689-95.

6. Huang H, Kwok KC, Liang HH. Inhibitory activity and conformation changes of soybean trypsin inhibitors induced by ultrasound. Ultrasonics Sonochem. 2008;15:724-30.

7. Mendes WS, Silva IJ, Fontes DO, Rodriguez NM, Marinho PC, Silva FO et al. Composição química e valor nutritivo da soja crua e submetida a diferentes processamentos térmicos para suínos em crescimento. Arq Bras Med Vet Zootec. 2004;56(2):207-13.

8. Wiriyaumpaiwong S, Soponronnarit S, Prachayawarakorn S. Comparative study of processes for full-fat soybeans. J Food Engin. 2004;65:371-82.

9. Brito CO, Albino LFT, Rostagno HS, Gomes PC, Dionizio MA, Carvalho DCO. Adição de complexo multienzimático em dietas à base de soja extrusada e dempenho de pintos de corte. Rev Bras Zootec. 2006;35(2):457-61.

10. Oliveira FN, Costa FGP, Silva JHV, Brandão PA, Júnior VSA, Nascimento GAJ et al. Desempenho de frangos de corte nas fases de crescimento e final alimentados com rações contendo soja integral extrusada em diferentes temperaturas. Rev Bras Zootec. 2005;34(6):1950-5.

11. Oliveira AC, Reis SMPM, Carvalho EM, Pimenta FMV, Rios KR, Paiva KC et al. Adições crescentes de ácido fítico à dieta não interferiram na digestibilidade da caseína e no ganho de peso em ratos. Rev Nutr Campinas. 2003;16(2):211-7.

12. Martinez-Valverde I, Periago M, Ros G. Significado nutricional de los compuestos fenólicos de la dieta. Arch Latinoam Nutr. 2000;50(1):5-18.

13. Martinez-Dominguez B, Gomes MVI, León FR. Ácido fítico: aspectos nutricionales e implicaciones analíticas. Arch Latinoam Nutr. 2002;52(3):219-31.

14. Kumar V, Sinha AK, Makkar HPS, Becker K. Dietary roles of phytate and phytase in human nutrition: A review. Food Chem. 2010;120:945-59.

15. Quirrenbach HR, Kanumfre F, Rosso ND, Carvalho Filho MA. Comportamento do ácido fítico na presença de Fe(II) e Fe (III). Ciênc Tecnol Alim. 2009;29(1):24-32.

16. Filgueiras CT, Soares AL, Shimokomaki M, Ida EI. Avaliação da atividade antioxidante do ácido fítico de germe de milho. Quím Nova. 2009;32(7):1787-91.

17. Olguin MC, Hisano N, D’Ottavio AE, Zingale MI, Revelant GC, Calderari SA. Nutritional and antinutritional aspects o fan Argentinian soy flour assessed on weanling rats. J Food Composit Anal. 2003;16:441-9.

18. Machado FPP, Queiróz JH, Oliveira MGA, Piovesan ND, Peluzio MCG, Costa NMB et al. Effects of heating on protein quality of soybean flour devoid of Kunitz inhibitor and lectin. Food Chem. 2008;107(2):649-55.

19. Ramos N, Lúquez J, Eyherabide G. Calidad de le harina de soja sometida a distintos tratamientos térmicos para inactivar los factores antinutricionales. Tecnol Proces. 2006:681-3.

20.AOAC. Association of Official Analytical Chemists. Official methods of analysis of the AOAC International. 16th ed. Maryland, 1997.

21. AOCS. American Oil Chemists Society. Tentative method Ba 9-58 – Urease activity. In: Smith AK, Circle SJ. Soybeans: chemistry and technology. 1978; 1:454-5.

22. Brasil. Diário Oficial da União. Portaria de 4 de setembro de 1991 que estabelece os Métodos Analíticos para Controle de Alimentos para uso Animal. DOU número 108 de 17 de setembro de 1991. 1991; 19813.

23. AOAC. Association of Official Analytical Chemists. Official methods of analysis of the AOAC International. 15th ed. Washington, DC. 1990.

24. Sandberg A, Ahderinne R. HPLC method for determination of inositol tri-, tetra-, penta-, hexaphosphates in foods and intestinal contents. J Food Sci. 1986;51:547-50.

25. SAS. System for Windows. Version 9.00. Cary, North Caroline: SAS Institute, 2002.

26. Araba M, Dale NM. Evaluation of protein solubility as an indicator of overprocessing of soybeans meal. Poult Sci. 1990;69: 76-82.

27. Esteves EA, Martino HSD, Oliveira FCE, Bressan J, Costa NMB. Chemical composition of a soybean cultivar lacking lipoxygenases (lox2 and lox3). Food Chem. 2010;122(1):238-42.

28. Monteiro MRP, Costa NMB, Oliveira MGA, Pires CV, Moreira MA. Qualidade proteíca de linhagens de soja com ausência do Inibidor de Tripsina Kunitz e das isoenzimas Lipoxigenases. Rev Nutr. 2004;17(2):195-205.

29.Mendes FQ, Oliveira MGA, Cardoso LR, Costa NMB, Sant’ana RCO. Digestibilidade protéica e caracterização bromatológica de linhagens de soja com ausência ou presença do inibidor de tripsina kunitz e das isozimas lipoxigenases. Biosci J. 2007;23(1):14-21.

30. Morais RMA, José IC, Ramos FG, Barros EG, Moreira MA. Caracterização bioquímica de linhagens de soja com alto teor de proteína. Pesq Agropec Bras. 2006;41(5):725-9.

31.Ciabotti S, Barcellos MFP, Mandarino JMG, Tarone AG. Avaliação química e bioquímica dos grãos, extratos e tofus de soja comum e de soja livre de lipoxigenase. Ciênc Agrotéc. 2006;30(5):920-9.

32. Carvalho WL, Oliveira MGA, Barros EG, Moreira MA Lipoxygenases affect protease inhibitor levels in soybean seeds. Plant Physiol Biochem. 1999;37:497-501.

33. Silva OC, Andrade GF, Dantas MIS, Costa NMB, Peluzio MCG, Martino HSD. Influência do processamento na qualidade protéica de novos cultivares de soja destinados à alimentação humana. Rev Nutr. 2010; 23(3):389-97.

34. Perilla NS, Cruz MP, de Belalcázar F, Diaz GJ. Effect of temperature of wet extrusion on the nutricional value of full-fat soybeans for broiler chickens. Brit Poultry Sci. 1997;3(4)8:412-6.

35. Silva MR, Silva MAAP. Aspectos nutricionais de fitatos e taninos. Rev Nutr. 1999;12(1):5-19.

36. Souza CMMCA. Mecanismos fisiológicos e bioquímicos de regulação da biossíntese de ácido fítico em grãos de dois genótipos de feijoeiro (Phaseolus vulgaris L.). [tese de doutorado] Piracicaba: 2003. Universidade de São Paulo.

37. Kumar V, Rani A, Pandey V, Chauhan GS. Changes in lipoxygenase isozymes and trypsin inhibitor activity in soybean during germination at different temperatures. Food Chem. 2006;99:563-8.

38. Carvalho AW. Caracterização nutricional, biodisponibilidade de ferro e qualidade protéica de novo cultivar de soja sem lipoxigenases e de elevado teor protéico. [dissertação de mestrado]. Viçosa: Universidade Federal de Viçosa, 2009.

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Copyright (c) 2010 Gláucia Ferreira Andrade, Maria Inês de Souza Dantas, Newton Diniz Piovesan, Renato Moreira Nunes, Everaldo Gonçalves de Barros, Neuza Maria Brunoro Costa, Hércia Stampini Duarte Martino

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